WWW.EL.Z-PDF.RU
БИБЛИОТЕКА  БЕСПЛАТНЫХ  МАТЕРИАЛОВ - Онлайн документы
 

Pages:     | 1 ||

«БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА ТУБЕРКУЛЕЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА И ВИДОВАЯ ПРИНАДЛЕЖНОСТЬ НЕТУБЕРКУЛЕЗНЫХ МИКОБАКТЕРИЙ, ВЫДЕЛЕННЫХ В РЕСПУБЛИКЕ ТАДЖИКИСТАН ...»

-- [ Страница 2 ] --

Главные реки: Пяндж и Вахш, водохранилища: Муминабадское, Сельбурское и другие.Климат-континентальный. Природно-климатические условия области отличаются неоднородностью, что связано с различной формой рельефа, большим диапазоном высот и различной ориентацией горно-долинных систем. Климат характеризуется большими суточными колебаниями температур воздуха, интенсивной солнечной радиацией и малой облачностью. Выпадение большей части осадков приходится в зимний-весенний период, для летнего периода характерны длительные засухи.

По характеру хозяйственной деятельности территория области делится на четыре климатических пояса: жаркий пояс, теплый пояс, прохладный пояс и холодный пояс.

Исходя из природной зональности, урожайности почв и наличия кормовой базы, области животноводства распределены по видам животных.

Ведется разведение гиссарских, тонкорунных каракульских овец, молочное скотоводство, разводят крупный рогатый скот и коз.

4.1.2. Анализ эпизоотической ситуации по туберкулезу крупного рогатого скота в Хатлонской области РТ

Хатлонская область была неблагополучной по туберкулезу крупного рогатого скота с 1970 года, самое большое выделение больных животных было выявлено в 1987 году, когда при проведении комиссионных исследований процент зараженности поголовья достиг до 3,12%, а целом по республике при проведении исследований количество выделенных больных животных в 1994 году составило–2,5%.

Анализ эпизоотической ситуации по туберкулезу крупного рогатого скота за последние годы представлен в таблице 3.

Таблица 3.

Эпизоотическая ситуация по туберкулезу крупного рогатого скота в Хатлонской области РТ за 2001-2011 гг.

Годы Исследовано

Выявлено больных %выявления

Всего Общест-

венный сектор Индиви-

дуальный

сектор

Всего Общест-

венный сектор Индиви-

дуальный

сектор

2001 55430 46213 9217 - - - 2002 34567 27825 6742 - - - 2003 34567 27825 6742 227 225 2 0,65

2004 65630 50327 15303 69 68 1 0,1

2005 44286 33069 11217 2006 45682 34465 11217 60 59 1 0,1

2007 84297 45076 39221 10 6 4 0,01

2008 68253 24793 35460 4 4 - 0,001

2009 77715 35561 42154 11 7 4 0,01

2010 61691 25265 36426 4 4 - 0,001

2011 88136 22845 65291 5 5 - 0,001

Представленные в таблице данные показывают, что в результате проведенных оздоровительных мероприятий количество выявления реагирующих на туберкулин животных уменьшилось. Так, процент зараженности туберкулезом крупного рогатого скота в 2003 г. составлял – 0,65%, а к 2011 г. снизился до 0,001%.

Следует указать, что после распада СССР, планомерные противотуберкулезные мероприятия в Хатлонской области РТ стали проводить только с 2006 года.

В 2006 г. в хозяйствах области было исследовано 45 682 голов крупного рогатого скота из них 34465 голов в общественном секторе и 11217 голов в индивидуальном секторе. При этом выявлено реагирующих в общественном секторе -60 (0,17%), в частном – 1 (0,001%). Животноводческие хозяйства области оздоровливали методом выявления и убоя больных туберкулезом животных и полной заменой поголовья здоровыми животными из благополучных хозяйств других областей. Эпизоотическое обследование неблагополучных по туберкулезу хозяйств в этот период показало, что одной из причин длительного неблагополучия хозяйств в области заключалось в том, что диагностические исследования животных проводились с неполным охватом поголовья, допускалась передержка больных животных на фермах и подсобных хозяйствах, телят кормили необеззараженным молоком, а для воспроизводства использовали молодняк, полученный от больных туберкулёзом животных.

Кроме того, немаловажной причиной возникновения туберкулеза и длительного проведения оздоровительных мероприятий в хозяйствах области являлась не качественная санация животноводческих помещений. Так, при исследовании объектов внешней среды, установлена инфицированность территории ферм, скотных дворов, животноводческих помещений возбудителями туберкулёза.

При исследовании 155 проб из объектов внешней среды неблагополучных по туберкулезу ферм было выделено 20 культур кислото-спиртоустойчивых микобактерий из них 3 культуры M. Bovis, 17- нетуберкулёзные микобактерии (идентификации нетуберкулезных микобактерий по видам не проводились). Кроме того, следует указать, что тёплый климат и многие другие внешние и внутренние условия для возникновения и распространения туберкулеза. Всего за 19 лет (1994-2012 гг.) в области было выявлено 82 неблагополучных пункта, выявлено 1566 голов реагирующих на туберкулин животных.

Эпидемическая ситуация по туберкулёзу

в Хатлонской области РТ

Таблица 4.

Заболеваемость людей туберкулёзом в Хатлонской области

2006-2011гг.

Районы Выявлено больных туберкулёзом людей - годы

2006 2007 2008 20009 2010 2011

Восейский 254 180 199 279 341 349

Кулябский 172 359 538 268 291 349

Фархорский 69 57 84 105 113 115

Всего по области 1853 2119 2496 2351 2412 2502

Данные таблицы показывают, что по данным санитарно-эпидемиологической службы, в районах области отмечается высокая заболеваемость туберкулёзом людей за 2006-2011 гг. Так, в 2006 г. в районах области было выявлено 1853 больных туберкулезом людей, а в 2011 г. – 2502. При этом, часто устанавливали внелегочную форму туберкулеза у людей. Болезненность составляла - 613, смертность - 51,2 на 100 тыс. населения. Наибольшая инфицированность людей туберкулезом регистрировалась в Восейском и Кулябском районах. Причем инфицированность животноводов обслуживающих неблагополучные по туберкулезу крупного рогатого скота хозяйства была в 2 раза больше, чем в благополучных по туберкулезу крупного рогатого скота хозяйствах. Так, при проведении профилактических исследований 104 животноводов Восейского района, при бактериологическом исследовании 31 пробы мочи, от одного владельца частного сектора хозяйства «Л. Лангариева», была выделена культура M. Bovis.

4.1.3. Оптимизация системы идентификации наиболее часто выделяемых видов микобактерий с применением культурально-морфологических, биологических молекулярно-генетических и бактериологических методов

Бактериологическое исследование предусматривает выделение возбудителя болезни в чистой культуре и его идентификацию по комплексу различных свойств. При проведении бактериологических исследований обычно руководствуются наставлениями и методичискими указаниями по диагностике инфекционных заболеваний.

Действующее в настоящее время «Наставление по диагностике туберкулеза животных» от 2002 г. предусматривает определение видов возбудителей туберкулеза и дифференциацию атипичных микобактерий по группировке Раньона, основанной на двух признаках: скорости роста на питательных средах и пигментообразовании. По этим признакам атипичные микобактерии разделяют на 4 группы (фотохромогенные, скотохромогенные, нефотохромогенные и быстрорастущие микобактерии). Определение видов атипичных микобактерий действующими нормативными документами не предусмотрено.

При бактериологическом исследовании биоматериала от реагирующих и нереагирующих на туберкулин животных, а также из объектов внешней среды могут одновременно выделяться возбудители туберкулеза и различные виды атипичных микобактерий. В целях идентификации микобактерий используют ключ, в котором приведены порядок применяемы тестов.

Ключ для идентификации микобактерий:

- определение родовой принадлежности выделенной культуры на яичных питательных средах;

- дифференциация возбудителей туберкулеза и нетуберкулезных микобактерий;

- дифференциация нетуберкулезных микобактерий на группы по Раньону;

- определение видов микобактерий по культурально – морфологическим, биохимическим, молекулярно-генетическим и биохимическим свойствам.

4.1.4. Определение родовой принадлежности, выделенных культур на яичных питательных средах

Для отнесения выделенных на яичных питательных средах колоний микроорганизмов к роду микобактерий определяют:

- кислото и спиртоустойчивость микроорганизмов при окраске по Циль-Нильсену;

- морфологию клеток и колоний;

- скорость роста на питательных средах (срок появления видимых колоний в сутки).

В настоящее время род Mycobacterium включает большое количество видов, объединяющим их свойством является кислотоустойчивость, которая связана с типом обмена веществ, характерным для этого рода бактерий.

Микобактерии медленно окрашиваются растворами анилиновых красок и не обесцвечиваются под воздействием минеральных кислот и этилового спирта. Однако, не все виды равномерно окрашиваются и, особенно, у быстрорастущих микобактерий, наряду с кислотоустойчивыми палочками, встречаются и некислотоустойчивые формы. Частичную кислоустойчивость наблюдают у представителей родов Nocardia, Rhodococcus, Corynebacterium (табл.5).

Таблица 5.

Характеристика рода микобактерий и родственных микроорганизмов

№ Исследуемый показатель Микобактерии Нокардии Родококки Коринебактерии

1 Срок появления видимых колоний (сут.) 3-40 2-5 2-3 2-3

2 Степень кислоустой-чивости В высокой степени кислоустойчивы (красные палочки на синем фоне) Частично кислото-устойчивы (красные и синие палочки) Частично кислото-устойчивы (красные и синие палочки) Иногда слабо кислотоустойчивы

3 Спиртоустойчивость Спиртоустой-чивы Не устойчивы Не устой-чивы Не устойчивы

4 Степень окрашивания по Грамму Слабая Выраженная Выраженная Выраженная

5 Морфология колоний R-форма (шероховатые, S-форма (гладкие). Кожисты, врастающие в среду, а также пастообразные либо сухие, крошашиеся Шероховаты, гладкие, слизистые. Круглые, выпуклые, гладкие (редко шероховатые).

6 Морфология клеток Палочковид-ные, прямые или искривленны, иногда булавовидные Образуют первичный мицелий, распадающийся на короткие ветвящиеся нити, кокки, палочки различной длины. Палочковидные с неветвящимся овальными клетками, хорошо развит мицелий Палочковидные, прямые или искривленные, клюшко или дубинкообразные. Часто расположены V-образно или палисадовидно

7 Количество атомов углерода миколовых кислот 60-90 44-60 34-64 22-38

4.1.5. Дифференциация возбудителей туберкулеза и нетуберкулезных микобактерий

К комплексу возбудителей туберкулеза, вызывающим заболевание животных, относятся M. Bovis, M. Tuberculosis, M. Africanum, M. Avium.

Нетуберкулезные микобактерии, обуславливающие микобактериозы животных, включают фотохромогенные, скотохромогенные, нефтохромогенные и быстрорастущие микобактерии.

Дифференциация возбудителей туберкулеза от нетуберкулезных микобактерий осуществляется по следующим характеристикам (включены ключевые тесты):

- скорость роста культур из биоматериала и в субкультуре 1-ой адаптивной генерации;

- пигментообразование;

- морфология колоний;

- рост на плотных питательных средах (Левенштейна-Йенсена) при разных температурах (определение верхнего температурного предела роста);

- рост на плотных питательных средах (Левенштейна-Йенсена) с добавлением салицилата натрия;

- рост на плотных питательных средах (Левенштейна-Йенсена) с 5% содержанием NaCI;

- рост на простых питательных средах (МПА и МПБ).

Характеристика возбудителей туберкулеза и нетуберкулезных микобактерий представлены в таблице 6.

Таблица 6.

Дифференциальная характеристика возбудителей туберкулеза и нетуберкулезных микобактерий

п/п Ключевые тесты Возбудители туберкулеза Нетуберкулезные микобактерии

M. Bovis M. Buberculosis M. Avium 1 Скорость роста культур (сут):- из биоматериала; - в субкультуре 1-ой адаптационной генерации 30-60 30-60 15-30 3-30

20-30 20-30 10-20 3-25

2 Морфология колоний S/R форма сухие, врастают в среду R/S форма, сухие, шерохов-е врастают в среду S форма, гладкие, влажные, сливающиеся Колонии разнообразные, S/R формы, гладкие, блестящие, редко шероховатые, мелянистые, сливающиеся

3 Пигментообразование Белые или сероватого цвета Цвета слоновой кости Серовато-белые Различная – от серовато-белых до желтого, оранжевого

4 Рост на среде Левенштейна-Йенсена при 20-22оС - - +- +

37оС + + + +

45оС - - + -

5 Рост на МПБ - - +- +,+-,-

6 Растворимость в физиологическом растворе R- формы трудно раство-римы R- формы трудно раство-римы Равномерная взвесь Равномерная взвесь

7 Рост на среде с салицилатом натрия - - + +

8 Рост на среде с 5%NaCi - - - +-

9 Гидролиз Твин-80 - - - +-

Обозначения: «-»- отсутствие роста или признака; «+» - имеется рост; «+-» - скудный рост или некоторые виды микобактерий дают положительную, а другие отрицательную реакцию.

Разделение возбудителей туберкулеза и нетуберкулезных микобактерий на основании их бактериологических свойствах и способности расти на простых (МПА и МПБ) и элективных питательных средах Левенштейна-Йенсена с химическим добавками. M. Bovis и M. Tuberculosis не растут на средах с добавлением салициловокислого натрия и 5% NaCI.

Колонии M. Tuberculosis на среде Левенштейна-Йенсена сухие, светло-кремового цвета, шероховатые (R-форма), толстые, приподнятые в центре, с морщинистой поверхностью и неровными краями. Иногда бывают гладкие, полушаровидные, мягкие, влажные, слегка складчатые (S-форма). Первичный рост появляется на 30-60 дни.

M. Bovis обычно выделяется в виде медленно растущего S –варианта, но при пересеве редко могут возникать R-варианты, характерен рост через 20-60 сут, в виде скудно растущих мелких, шариковидных, цвета слоновой кости колоний. Редко встречаются культуры, образующие моршинистые колонии. В первой адаптационной генерации культуры вырастают к концу второй недели. Рост микобактерий наблюдается при 37оС; при более высоких и более низких температурах рост микобактерий не наблюдается.

Таким образом, M. Bovis и M. Tuberculosis характерна совокупность признаков: медленная скорость роста (более 3-х недель); рост при температуре 37оС; отсутствие пигментообразованя (цвет слоновой кости); выраженная кислоустойчивая окраска; отсутствие роста на среде Левенштейна-Йенсена содержащей салициловокислый натрий и 5% хлорида натрия.

Рост M. Bovis в первичных культурах, как правило, появляется к концу первого месяца, а при пересеве – к 10-20 дню.

Колонии микобактерий туберкулеза птичьего вида серовато-белые, гладкие, влажные в физрастворе образуют равномерную взвесь. Растут при 37оС и 45оС. При комнатной температуре дают скудный рост. Не растут на МПА при 37оС и 22оС. На МПБ дают придонный скудный рост.

Культуры микобактерий, выросшие на протяжении 5-30 сут. гладкие, блестящие, бесцветные, или имеющие оранжевый, желтый, лимонный или красный цвет, относят к нетуберкулезным микобактериям.

4.1.6. Дифференциация нетуберкулезных микобактерий на группы по Раньону

Принадлежность нетуберкулезных микобактерий к группам по Раньону определяют по скорости роста колоний на плотных питательных средах, их способность образовывать пигмент на свету и в темноте, рост на простых питательных средах (МПА и МПБ) при разных температурах (табл. 7).

Таблица 7.

Дифференциация нетуберкулезных микобактерий на группы Раньона

п/п Ключевые тесты Группы по классификации Раньона

Фотохромо-генные Скотохромо-генные Нефтохромо-генные Быстро-растущие

1 Скорость роста культур на среде Левенштейна-Йенсена М, 20-30 сут М, 10-15 сут М, 10-14 сут Б, 3-6 сут

2 Форма колоний R S S\R R\S

3 Рост культур на среде Левенштейна-Йенсена при температурах при 20-22оС - + - + - +

37оС + + + +

45оС - - + +

4 Пигментообразование (цвет колоний) на свету (желтый) + - Некоторые виды образуют пигмент

в темноте - (желтый) - 5 Рост на МПА при 20-22оС - - - -

37оС + - + + - +(3-5 дн)

45оС - - - +-

Рост на МПБ - - - +

6 Гидролиз на МПБ - + - - + + -

Обозначения: «+»- имеется рост; «-» - отсутствует рост; «+-»- скудный рост; «+,-»- культуры некоторых видов растут при этих условиях, другие не растут; «М»- медленнорастущие; «Б»- быстрорастущие.

Культуры микобактерий, вырастающие на питательных средах в течение 10-30 дней, не образующие в темноте и образующие после искусственного освещения желтый или оранжевый цвет, относят к фотохромогенным (1 группа по Раньону).

Культуры микобактерий, вырастающие через 10-20 суток и приобретающие в темноте и на свету оранжевый, или желтый цвет, относят к скотохромогенным (2 группа по Раньону).

Культуры микобактерий, рост которых появляется через 10-30 дней после посева, а цвет их колоний остается белым или серовато-белым в темноте и на свету, относят к нефтохромогенным (3 группа по Раньону).

Культуры микобактерий, вырастающие на 3-5 день посева, имеющие на свету и в темноте белый, желтый или красный цвет, растущие на МПА и МПБ, относят к быстрорастущим (4 группа по Раньону).

Каждый вид микобактерий имеет не только общие, но и характерные для него свойства, которые определяют «ключевыми» тестами. Для ветеринарии особое значение имеют возбудители туберкулеза и отдельные виды нетуберкулезных микобактерий, наиболее часто встречающиеся на территории страны.

4.1.7.Частота выделения микобактерий из биоматериала от реагировавших и не реагировавших на туберкулин животных и объектов внешней среды в РТ

В соответствии ветеринарных и санитарных правил, а также «Наставления по диагностке туберкулеза животных» при проведении профилактических и оздоровительных мероприятий основным методом прижизненной диагностики туберкулеза крупного рогатого скота является внутрикожная туберкулиновая проба с ППД-туберкулином для млекопитающих. При этом, для определения эпизоотического статуса стада проводят комплекс аллергических патоморфологических и бактериологических исследований.

В соответствии поставленных задач исследований нами проведены бактериологические исследования биоматериала от 124 голов крупного рогатого скота и 44 проб объектов внешней среды. Результаты исследований представлены в таблице 8.

Таблица 8.

Результаты исследования биоматериала от крупного рогатого скота и объектов внешней среды

п\п Исследованный материал Исследовано всего проб Выделено культур микобактерий %

1 Исследовано проб биоматериала от крупного рогатого скота, всего 124 44 35,4

2 Из них проб биоматериала от реагировавшего на туберкулин крупного рогатого скота 74 32 43,2

3 От нереагирующих на туберкулин животных 50 12 24,0

4 Пробы из кормушек и поилак 28 10 35,7

5 Пробы подстилки из соломы 8 3 37,5

6 Пробы подстилочного материала и опилок 8 2 25,0

Всего 168 59 35,1

Из данных таблицы видно, что при исследовании 168 проб биоматериала от убитых животных и объектов внешней среды выделено 59 культур атипичных (нетуберкулезных) микобактерий, что составляет 35,1% от числа исследованных проб.

При этом при исследовании 124 проб биоматериала от убитых животных выделено 44 культуры (35,4%) атипичных микобактерий.

Из них при исследовании 74 проб биоматериала от реагировавшего на туберкулин крупного рогатого скота выделено 32 (43,2%) культур атипичных микобактерий, а при исследовании 50 проб биоматериала от нереагирующих на туберкулин животных выделено 12 (24,0%) культур микобактерий

Проведенные нами бактериологические исследования показывают, что на территории республики Таджикистан атипичные микобактерии выделяются и от реагирующих и от нереагирующих на туберкулин животных. От нереагирующих на туберкулин атипичные микобактерии выделяются в меньшем количестве, чем от реагирующих на туберкулин животных. Так, при наших исследованиях из биоматериала от реагирующих на туберкулин животных атипичные микобактерии выделены в 43,2% случаях, а из биоматериала от нереагировших на туберкулин животных в 24,0% случаях.

При бактериологическом исследовании проб объектов внешней среды, наибольшие количество атипичных микобактерий было выявлено при культуральном исследовании проб – смывов ватными тампонами от стенок кормушек и поилок, а также проб подстилки из соломы – 35,7-37,5%.

Всего при исследовании 168 проб биоматериала от убитых животных и объектов внешней среды выявлено 59 (35,1%) культур атипичных микобактерий. Полученные нами результаты исследований показывают, что атипичные микобактерии выделяются практически во всех исследованных хозяйствах и населенных пунктах Республики Таджикистан от реагирующих и нереагирующих на туберкулин животных и объектов внешней среды.

Дифференциация выделенных культур атипичных микобактерий по группировке Раньона

Для систематизации выделенных культур атипичных микобактерий использовали метод группировки по Раньену, основанный на двух признаках: на скорости роста на питательных средах и пигментообразовании. В начальном этапе исследований мы изучали тинкториальные свойства атипичных микобактерий, интенсивность и характер их роста на среде Левенштейна - Йенсена при разных температурах, а также способность к пигментообразованию.

Исследования проводили в следующем порядке:

- окраска мазков - препаратов по Циль - Нильсену для определения кислотоустойчивости культур и их чистоты;

- приготовление взвеси микобактерий (1 мг/ мл), посев на 6 пробирок среды Левенштейна - Йенсена и выращивание при разных температурах (250,370 и 45 0 С);

- посев на среду Левенштейна - Йенсена с 5% хлористым натрием и на МПБ при 370С.

- учет интенсивности и характера роста культур на МПБ;

- учет интенсивности и характера роста культур на среде Левенштейна – Йенсена;

- дифференциация культур микобактерий по скорости роста на быстро- растущие и медленнорастущие;

- определение способности культур к пигментообразованию методом освещения культур.

При этом, вначале из каждой культуры микобактерий готовили мазки- препараты, окрашивали по Циль - Нильсену и просматривали под микроскопом с иммерсионной системой. В результате проведенных исследований установили, что все 59 выделенных нами культур микобактерий хорошо окрашивались по Циль - Нильсену, являлись кислото- устойчивыми и не были загрязнены посторонней микрофлорой.

Для посева готовили взвесь микобактерий в концентрации 1 мг/мл. Основные свойства микобактерий изучали в соответствии представленной таблицы 9.

Таблица 9.

Основные свойства по скорости роста и способности пигментообразования атипичных микобактерий

Микобактерии Скорость роста

(сут.) Пигменто-образование Рост на яичных средах при t0C Рост на МПБ Рост на среде с салицилатом натрия

Из материала В субкульту-ре 250 370 450 Фотохромо-генные

(I группа) 15-30 10-20 Оранж. пигмент на свету ± + - ± +

Скотохромо-генные

(II группа) 15-30 10-25 Оранж. пигмент на свету и в темноте + + - ± +

Нефотохромо-генные

(III группа) 15-20 10-25 нет ± + ± ± +

Быстрорастущие (IV группа) 3-10 3-5 Могут образ пигмент ± + ± +

+

Распределение выделенных нами культур атипичных микобактерий по скорости роста и

способности к пигментообразованию представлены в таблице 10.

Таблица 10.

Распределение 59 выделенных культур микобактерий по группам в соответствии

классификации по Раньону.

Группа по Раньону Количество культур Культурально - морфологические свойства

Рост при t 0С Форма роста Образов пигмента Рост на МПБ

250 370 450 S R На свету В темноте В виде кольца В виде осадка

I -1

(1,7%) + + - + - + - - +

II 9

(15,2%) + + - + - + + - +

III 17

(28,8%) +

- + +

- + - - - - +

IV 32

(54,2%) + + +

- +

- +

- +

- +

- + -

Итого: 59

Условные обозначения: ‘’+’’- есть рост

‘’-‘’ -рост отсутствует

‘’+ ‘’ – некоторые культуры растут при этих

условиях, другие нет

В результате проведенных исследований все 59 изучаемых культур атипичных микобактерий были распределены на 4 группы по классификации Раньона.

К I группе отнесли только одну культуру атипичных микобактерий, которая росла в S- форме, образовала пигмент под воздействием света, росла медленно при t -250С и 370С, не росла при t- 450С.

К II группе отнесли 9 медленнорастущих в S-форме культур атипичных микобактерий, образующих желтый или оранжевый пигмент на свету и в темноте. Рост при t – 450С отсутствовал.

К III группе отнесли 17 медленно растущих без пигментных культур атипичных микобактерий, которые росли и в S- форме, и в R-форме.

К IV группе быстрорастущих микобактерий отнесли 32 культуры атипичных микобактерий, которые вырастали с образованием пигмента и без образования пигмента. Росли на МПБ в виде пристеночного кольца или пленки на поверхности МПБ в течении 3 дней.

Данные таблицы 10 показывают, что из 59 изучаемых культур- 1 (1,7%) была отнесена к I группе, 9 (15,2%) - к II группе, 17 (28,8 %) - к III группе и 32(54,2 %) - к IV группе атипичных микобактерий по классификации Раньона, т.е. на территории республики Таджикистан наиболее часто (54,2%) выделяются атипичные микобактерии IV группы по классификации Раньона.

Следует указать, что для уточнения и проверки скорости роста атипичных микобактерий, а также дифференциации быстрорастущих атипичных микобактерий от медленно растущих микобактерий мы использовали мясо - пептонный бульон (МПБ). Все изучаемые культуры атипичных микобактерий росли при t – 37 0С на МПБ, но все 32 быстрорастущих атипичных микобактерий уже через 3 дня после посева росли с образованием на поверхности МПБ пристеночного кольца или пленки, тогда как медленнорастущие атипичные микобактерии образовывали только придонный рост. При проведении исследований также установлено, что хранение культур микобактерий нужно проводить на МПБ, так как хранение культур на плотной питательной среде Левенштейна - Йенсена более чем 3 месяца, приводит к высыханию питательной среды и соответственно культур микобактерий.

Хранение культур микобактерий в пробирках с МПБ сохраняет культуры микобактерий более чем 12 месяцев.

В дальнейшем, в своих исследованиях, с целью установления видов изучаемых нами атипичных микобактерий I, II, III и IV группы по классификации Раньона мы проводили изучение биохимических свойств культур атипичных микобактерий.

Изучение биохимических свойств выделенных культур атипичных микобактерий

Для изучения биохимических свойств культур атипичных микобактерий мы использовали следующие тесты: реакцию каталазной активности, реакцию термостабильности каталазы, гидролиз-твин – 80, осаждение лимонно-аммиачного железа, формамидазную, никотинамидазную, пиразинамидазную и арилсульфатазную активность, редукцию теллурита и телерантность к хлористому натрию. Такие биохимические тесты, как ниациновая проба, корд- фактор, редукция нитратов и другие, связанные с идентификацией M. Tuberculosis и M. Bovis. Мы не использовали, так как возбудители туберкулеза среды изученных нами культур отсутствовали и такой задачи мы не ставили.

Каталазная активность. Реакция основана на свойстве фермента каталазы, разлагать перекись водорода на воду и кислород. Реакция является простой и быстро выполнимой, но, как и другие биохимические тесты, требует одинаковых условий при ее выполнении для всех культур. Необходим определенный возраст (для быстрорастущих культур 5-7 дней, для медленнорастущих - не менее 3 недель) в фазе интенсивного роста, с достаточным количеством бактериальной массы.

При изучении каталазной активности все неследуемые культуры, отнесенные по культуральным и морфологическим свойствам к микобактериям I, II и IV группы по Раньону, дали положительную реакцию, а культуры микобактерий, отнесенные к нефотохромогенным микобактериям III группы по Раньону – отрицательную реакцию.

Культуры микобактерий I и II группы по Раньону образовывали столбик пены более 100 мм, а быстрорастущие микобактерии, хотя и давали положительную реакцию, но высота столбика пены была различная. У одних культур она разнялась 55, у других- 80, а у третьих – 100 и более мм.

Термостабильность каталазы. Реакция основана на неодинаковой устойчивости фермента каталазы к нагреванию у различных видов микобактерий. Она проста для выполнения, но требует дефицитных реактивов.

Гидролиз твин-80. Тест использован нами для дифференциации фотохромогенных, скотохромогенных, а также микобактерий комплекса avium-intracellulare от других видов нефотохромогенных микобактерий III-й группы по Раньону. Его проводили с медленно растущими культурами. Для видовой дифференциации быстрорастущих микобактерий IV группы по Раньону он мало пригоден.

Реакция осаждения лимонно- аммиачного железа. Эту реакцию применили для видовой дифференциации быстрорастущих микобактерий IV группы по Раньону. Реакция проста при выполнении, но окончательный ее учет проводится только через 2 недели, что не совсем удобно. При проведении реакции осаждения лимонно- аммиачного железа получили положительную реакцию у всех 32 культур быстрорастущих микобактерий.

Формамидазная активность. Эту реакцию использовали для дифференциацию быстрорастущих от медленнорастущих микобактерий, которые входят в I, II и III группу по Раньону. Хотя реакция показала хорошие результаты, однако она не дифференцирует микобактерии на виды и является трудоемкой при выполнении. Поэтому считаем, что ее вполне может заменять тест изучения интенсивности роста культур при 250С., а также изучение культур на МПБ при 370С.

Амидазная активность. Реакция основана на гидролизе амидов ферментом амидазой, при которой образуется аммиак, определяемый по методу Несслера с помощью фенолового реактива и гипохлорита. Нами использован этот тест для видовой дифференциации медленно растущих микобактерий с тремя амидами: никотинамидом, пиразинамидом и мочевиной.

Реакция теллурита. Основана на его восстановлении под действием фермента редуктазы и применяется для дифференциации быстрорастущих микобактерии IV группы по Раньону, а также микобактерий комплекса avium-intracellulare от других видов медленно растущих атипичных микобактерий. Реакция проста при выполнении и изучение исследуемых культур показало, что микобактерии I– й и II– й группы по Раньону дают отрицательные – а микобактерии III- й и IV группы - положительные реакции на редукцию теллурита.

Арилсульфатазная активность. Эта реакция выявляет способность фермента арилсульфатазы отщеплять свободный фенолфталеин в присуствии трикалийфенолфталеиндисульфата, который образует с едким натрием динатриевый фенолфталеин, окрашивающий раствор в красный цвет.

Толерантность культур к хлористому натрию изучали на среде Левенштейна-Йенсена с добавлением 5%-ного хлористого натрия. На этой среде рост дали лишь быстрорастущие микобактерии IV группы по Раньону. У остальных культур в течение трех недель видимого роста не наблюдали. Если исходить из данных литературы о том, что на среде с 5%-ным хлористым натрием, кроме быстрорастущих микобактерий, могут еще расти M. Triviale, принадлежащие к III-й группе по Раньону, то по результатам реакции, с учетом других тестов можно сделать вывод об отсутствии этого вида микобактерий среди изучаемых нами культур.

Результаты проведенных нами исследований по идентификации выделенных культур атипичных микобактерий представлены в таблице 11.

Данные таблицы показывают, что по результатам проведенных биохимических тестов и с учетом культурально-морфологических свойств, одна исследуемая фотохромогенная культура атипичных микобактерий отнесена нами к М. Marinum. Из 9 исследованных культур II группы по классификации Раньона, 4 скотохромогенные культуры отнесены к M. Gordonae и 5 - к M. Scrofulaseum. Из 17 нефотохромогенных атипичных микобактерий III группы по классификации Раньона 10 отнесены к комплексу avium-intracellulare без разделения их на виды, так как для их дифференциации одних биохимических и морфологических тестов явно не достаточно, т.к. M. Avium M. Intracellulare бактериологическими и биохимическими тестами практически не различимы, их рассматривают как микобактерии комплекса avium-intracellulare (M. Avium – Intracellulare). Остальные 7 нефтохромогенные атипичные микобактерии III группы по классификации Раньона предварительно отнесены нами 3-к M. Nonchromogenisum; 2- к M. Triviale.

Из 32 быстрорастущих атипичных микобактерий IV группы по классификации Раньона 17 культур отнесены нами к M. Fortuitum, 8 – к M. Smegmatis, 4- к M. phlei и 3 - к M. Vaccae.

Таблица 11.

Биохимическая идентификация выделенных микобактерий

п/п Наименование теста Группы по Раньону

I II III IV

M.Marinum M.Scrofulaceum

M. Gordonae M. Avium M.Nonchrom M.Terrae

M.Triviale M. Phlei M.Fortuitum M.Smegmatis

M. Vaccae

1 Каталазная активность 45 мм - + + - + + +

+ + + +

2 Термостабильность каталазы 630С - + + + + + + + + + +

3 Гидролиз Твин -30 + - + - + + + + - + +

4 Осаждение железа + + + + 5 Формамидазная активность - - - - - - - + + + +

6 Никотамидазная активность + + - + + - - + - + +

7 Пиразинамидазная активность + + - + + - - + - + -

8 Урозная активность + + - - - - - + - +

9 Редукция теллурита (3 дня) - - - + - - - + + + +

10 Арилсульфатазная активность (3 дня) - - - - - - - - + - -

11 Толерантность к NaCI - - - - - - + + + + +

Изучение биохимических свойств исследованных культур показывают, что все пользованные нами методы являются ценными только при комплексном их применении для идентификации культур атипичных микобактерий. Лишь комплекс этих методов дает возможность определить принадлежность культуры атипичных микоьбактерий к определенному виду с обязательным учетом ее культуральных свойств.

Идентификация культур с использованием только отдельных биохимических тестов может привести к обычным результатам, так как надежность реакции зависит от качества химических реактивов, возраста исследуемой культуры, количества бактериальной массы, состава питательной среды и пр.

На основании проведенных исследований считаем, что из всех изученных нами биохимических тестов, наиболее приемлемыми и простыми для выполнения, являются каталазная активность, редукция гидролиза Твин- 80 и толерантность к хлористому натрию. В дальнейшем, считаем возможным использовать минимальное количество культуральных и биохимических тестов, которые можно применять для разделения атипичных микобактерий четырех групп Раньона на виды.

В заключение главы диссертационной работы, анализируя проведенные исследования и полученные результаты исследований, мы делаем несколько предварительных выводов:

а) - по мере уменьшения количеств заболевших туберкулезом крупного рогатого скота и сокращения количества неблагополучных пунктов в республике Таджикистан, от убитых с диагностической целью животных, объектов окружающей среды, а также кормов при бактериологическом исследовании, увеличивается выделение нетуберкулезных атипичных микобактерий.

б) - при бактериологическом исследований биоматериала от 124 голов убитых коров (из них 74-реагировавшие на туберкулин, 50 – нереагировавшие на туберкулин) выделено 44 культуры атипичных микобактерий. При исследовании 44 проб из объектов внешней среды выделено 15 культур атипичных микобактерий. Всего выделено 59 культур атипичных микобактерий;

в) - из 59 культур атипичных микобактерий по скорости роста и способности к пигментообразованию были отнесены: к I группе по классификации Раньона 1 (1,7%); к II группе – 9 (15,2%); к III группе - 17 (28,8%); к IV группе - 32 (54,2%);

г) - по результатам биохимических тестов и с учетом результатов культурально-морфологических свойств выделенные нами культуры атипичных микобактерий распределены по группам и видам микобактерий: I группа – M. marinum; II – группа – 9 культур, из них – 5 M. Scrofulaceum, 4 – M. Gordonae; III группа – 17 культур, из них 10- M. Avium – Intracellulare, 3 – M. Nonchromogenicum, 2- M. Terrae, 2- M. Triviale; IV группа – 32 культуры, из них – 17 M. Smegmatis, 4- M. Flei, 3- M. Vaccae.

4.1.8. Изучение сенсибилизирующих свойств выделенных культур атипичных микобактерий

В соответствии «Наставления по диагностике туберкулеза животных» от 2002 года в целях установления причины выявления неспецифических реакций на туберкулин в благополучных по туберкулезу хозяйствах, рекомендуется изучать сенсибилизирующие свойства культур атипичных микобактерий, выделенных из биоматериала, реагировавших на туберкулин и убитых с диагностической целью животных.

При этом, каждую изучаемую культуру атипичных микобактерий вводят подкожно в дозе 1 мг/мл морским свинкам. Через 21-30 дней после введения культуры микобактерий морских свинок исследуют симультанной аллергической пробой с использованием ППД туберкулина для млекопитающих и КАМ.

Для симультанной пробы используют ППД туберкулин для млекопитающих в дозе 25 туберкулиновых единиц (ТЕ), КАМ - в дозе 10 единиц действия (ЕД), в объеме 0,1 мл растворителя или физиологического раствора с РН 7,0-7,2.

Аллергены вводят морским свинкам внутрикожного в депилированные участки кожи брюшка справа или слева методика разбавления аллергенов.

Для получения дозы ППД туберкулина для млекопитающих 25 ТЕ в 0,1 мл растворителя, 1 мл туберкулина переносят в пробирку с 9 мл физиологического раствора, перемешивают и 0,5 мл этого раствора переносят во вторую пробирку с 9,5 мл физиологического раствора. Таким образом, получается разведение туберкулина, содержащее в 0,1 мл 25 ТЕ ППД туберкулина для млекопитающих.

Для получения КАМ в дозе 10 ЕD в 0,1 мл растворителя, 1 мл раствора КАМ переносят в пробирки с 9 мл растворителя. После перемешивания 2 мл раствора из первой пробирки переносят во вторую пробирку с 11,5 мл растворителя. Для приготовления разведений каждого аллергена необходимо использовать отдельные пипетки.

Учет реакции и анализ результатов симультанной пробы проводят через 24 - 48 часа. Положительная реакция проявляется гиперемией кожи и образованиям припухлости диаметром 5 мм и более в местах введения аллергенов (иногда с некрозом в центре) Обнаружение реакции на один или оба аллергена свидетельствует о сенсибилизирующих свойствах изучаемой культуры.

В соответствии поставленных нами задач исследований мы провели изучение сенсибилизирующих свойств: M- Marinum – I гр. по Раньону M. Scrofulaceum,

M. Gordonae – II – гр. по Раньону, M. Avium – Intracellulare, – M. Nonchromogenicum, M. Triviale, M. Terrae- III гр. по Раньону, M Fortuitum, M. Smegmatis- M. Flei и M. Vaccae - IV гр. по Раньону.

Предварительно всех морских свинок исследовали внутрикожной симультанной пробой с ППД туберкулином для млекопитающих в дозе 25 ТЕ в 0,1 мл растворителя. При учете результатов исследований через 24 и 48 часа после введения аллергенов все морские свинки не реагировали на аллергены.

В дальнейшем морских свинок заражали подкожно в дозе 1 мг бакмассы каждого вида микобактерий в 1 мл физиологического раствора.

Через 30 дней всех подопытных животных исследовали симультанной пробой с ППД - туберкулином для млекопитающих и КАМ.

Всего в опыте использовали 11 культур атипичных микобактерий, 22 морских свинок (22 морских свинок для заражения культурами микобактерий, по 2 морских свинок на 1 культуру, 2 морские свинки – контрольная группа животных).

Результаты исследований представлены в таблице 12.

Таблица 12.

Результаты изучения сенсибилизированных свойств атипичных микобактерий в дозе 1 мг/ 1 мл

Группы Культуры микобактерий Морская свинка

№ Реакция на аллергены (в мм)

До заражения На 30 сутки после заражения

ППД мл КАМ ППД

мл КАМ

1 M. Marinum 1

2 -

- -

- -

- -

-

2 M. Scrofulaceum,

M. Gordonae 1

2 -

- -

- -

- -

-

3 M. Avium – Intracellulare

M.Nonchromogenicum

M. Triviale,

M. Terrae 1

2

1

2

1

2

1

2 -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

-

4 M. Fortuitum,

M. Smegmatis

M. Flei

M. Vaccae 1

2

1

2

1

2

1

2 -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

-

5 Контроль 1

2 -

- -

- -

- -

-

Представленные в таблице данные показывают, что при заражения в дозе 1 мг/мл различными культурами атипичных микобактерий I, II, III и IV группы по классификации Раньона, морские свинки не реагировали на внутрикожное введение ППД туберкулина для млекопитающих и КАМ.

В связи с полученными отрицательными результатами исследовании и данных доступной литературы о необходимости применения более высоких доз культур атипичных микобактерий, для выяснения сенсибилизирующих свойств, выделенных нами атипичных микобактерий, экспериментирующих свойств микобактерий мы повторяли с дозой введения 5 мг/мл. Результаты исследований представлены в таблице 13.

Таблица 13.

Результаты изучения сенсибилизирующих свойств атипичных микобактерий в дозе 5 мг/мл

Группы Культуры микобактерий Морская свинка

№ Реакция на аллергены

До заражения На 30 сутки после заражения

ППД мл КАМ ППД мл КАМ

1 M. Marinum 1

2 -

- -

- -

- -

-

2 M. Scrofulaceum,

M. Gordonae 1

2 -

- -

- -

- -

-

3 M. Avium – Intracellulare

M. Nonchromogenicum

M. Triviale,

M. Terrae 1

2

1

2

1

2

1

2 -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

-

4 M Fortuitum, M.Smegmatis

M.Flei

M. Vaccae 1

2

1

2

1

2

1

2 -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

-

5 Контроль 1

2 -

- -

- -

- -

-

Представленные данные в таблице также показывают, что при подкожном введении культур атипичных микобактерий в дозе 5 мг/мл, сенсибилизирующих свойств у изучаемых 11 видов атипичных микобактерий (M. Marinum, M. Scrofulaceum, M. Gordonae, M. Avium – Antracellulare M. Nonchromogenicum, M. Triviale, M. Terrae, M. Fortuitum, M. Smegmatis, M. Flei, M. Vaccae), мы не выявили.

Поэтому, эксперимент по изучению сенсибилизирующих свойств микобактерий, мы продолжили с увеличением заражающей дозы атипичных микобактерий до 10 мг/мл.

Результаты исследований представлены в таблице 14.

Таблица 14.

Результаты изучения сенсибилизирующих свойств атипичных микобактерий в дозе 10 мг/мл

Группы Культуры микобактерий Морская свинка

№ Реакция на аллергены

До заражения На 30 сутки после заражения

ППДмл КАМ ППД мл КАМ

1 M. Marinum 1

2 -

- -

- -

- -

-

2 M. Scrofulaceum

M. Gordonae

1

1

1

2 -

-

-

- -

-

-

- 8

7

-

- 12,0

17,0

-

-

3 M. Avium –

Intracellulare

M. Nonchromogenicum

M. Triviale,

M. Terrae 1

2

1

2

1

2

1

2 -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

- 8,0

6,0

5,0

7,0

-

-

-

- 20,0

17,0

14,0

13,0

-

-

-

-

4 M Fortuitum

M.Smegmatis

M. Vaccae

M.Flei

1

2

1

2

1

2

1

2 -

-

-

-

-

-

-

- -

-

-

-

-

-

-

- 7,0

8,0

8,0

9,0

6,0

5,0

-

- 13,0

9,0

12,0

13,0

9,0

7,0

-

-

5 Контроль 1

2 -

- -

- -

- -

-

Результаты исследований, представленные в таблице 14 показывают, что при подкожном заражении здоровых морских свинок атипичными микобактериями I,II, III и IV групп по классификации Раньона, в дозе 10 мг/ мл, некоторые виды атипичных микобактерий сенсибилизируют организмы морских свинок к внутрикожному введению ППД для млекопитающих и КАМ.

Так, в нашем опыте установлено, что M. Marinum (I группа по Раньону) сенсибилизирующими свойствами не обладает. M. Scrofulaceum обладает сенсибилизирующими свойствами, а M. Gordonae (II группа по классификации Раньона) - не обладает. Из III группы по классификации Раньона обладают сенсибилизирующими свойствами M. Avium – Intracellulare и M. Nonchromogenicum, а. M. Trivial и M. Terrae – не обладают. Из IV группы быстрорастущих микобактерий по классификации Раньона сенсибилизирующими свойствами обладают M. Fortuitum, M. Smegmatis и M. Vaccae, а M.Flei - не обладают.

Указанное позволяет нам считать, что установленные нами виды микобактерий играют ведущую роль сенсибилизации крупного рогатого скота к туберкулину на территории Республики Таджикистан.

Кроме того, проведенные исследования показывают, что зараженные атипичными микобактериями в дозе 10 мг/ мл морские свинки реагируют на внутрикожном введение ППД туберкулина для млекопитающих и на КАМ. Однако, отмечено, что реакция на ППД туберкулин для млекопитающих были менее выражены, чем на КАМ. Также установлено, что более интенсивные реакции на КАМ были у морских свинок, зараженных атипичными микобактериями II и III группы по классификации Раньона, что, по видимому, вполне закономерно, так как в состав КАМ входят, в качестве компонентов M. Scrofulaceum II группа по Раньону M. Avium – Intracellulare (III группа по Раньону), т.е. анологичные виды атипичных микобактерий II и III группы по Раньону.

5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ

Сравнительный картографический природно - климатический и хозяйственно - экономический анализ показывает, что Республика Таджикистан по рельефу занимаемой территории, природно- климатическим условиям, развитию сельскохозяйственного производства и по многим другим факторам является наиболее подходящим примером для многих республик бывшего союза.

Происходившиеся изменения эпизоотической ситуации по туберкулезу крупного рогатого скота были вызваны теми же самими причинами, что и во многих неблагополучных регионах России. Так, в последние годы сокращается численность сельскохозяйственных животных в хозяйствах общественного сектора, возрастает поголовье в личных подворьях.

Наши наблюдения показывают, что в горной зоне туберкулез крупного рогатого скота регистрируется заметно реже, чем на равнинной зоне.

Такое положение объясняется прежде всего природно - климатическими и хозяйственно - экономическими факторами, противодействующими распространению болезни в горной зоне. К этим факторам относятся: эффективность естественной санации пастбищ и при фермерских территорий; чистота воздуха и воды; богатая растительность пастбищ; небольшая плотность размещения сельскохозяйственных животных и преобладание мелких ферм; ограниченные межхозяйственные связи, собственное воспроизводство стада; достаточное количество естественных осадков.

Кроме того, почвы горной зоны существенно отличаются от солонцовых почв равнинных зон, что препятствует длительному выживанию микобактерий. По видимому, благодаря этим естественным и хозяйственным барьерам, туберкулез крупного рогатого скота регистрируется относительно редко.

В связи с изложенным, мы считаем возможным контроль благополучия стад крупного рогатого скота по туберкулезу в горных зонах проводить реже один раз в 2 года. Однако, в течение этих 2-х лет следует контролировать эпизоотическую ситуацию по туберкулезу крупного рогатого скота регулярном осмотром туш убойных животных.

Промежуточное положение между горной и плоскостной зонами занимает предгорная зона. В этой зоне все факторы, эффективно противодействующие распространению туберкулеза в горных зонах, в предгорной зоне приобретают более стертую форму.

Поэтому, учитывая сложившиеся условия и основываясь на результатах анализа эпизоотической ситуации за последние годы, считаем, целесообразным проводить контроль благополучия стад крупного рогатого скота по туберкулезу, в этой зоне проводить один раз в год внутрикожной туберкулиновой пробой. В равнинной зоне, где развитое интенсивное скотоводство с преимущественно стационарным содержанием животных - естественно выше риск заноса и распространения туберкулеза. Поэтому, считаем необходимым контроль благополучием хозяйств в этой зоне, проводить методом двукратных исследований поголовья крупного рогатого скота внутрикожной туберкулиновой пробой с убоем реагирующих животных, патолого- анатомическим исследованием и лабораторным исследованием биоматериала от убитых животных.

На зависимость интенсивности эпизоотического процесса туберкулеза крупного рогатого скота от природно – географических условий и хозяйственно – экономических факторов, указывали многие исследователи (Н.А. Александров, 1973; Г.В.Чепик, 1973; А.О. Бокун, 1976; Д. Д. Новак с соавт., 1979, 1985; Б.Г. Мотаев, 1979; С.И. Джупина, 1985; К.А. Шкиль, 1986; К.А. Шкиль с соавт., 1997; Н. Ярбаев, 1993; Д.М. Мирзоев, 1997; Р.А. Нуратинов, 2000; З.А. Казахмедов, 2004 и др.).

Проведенные нами исследования и полученные результаты анализа этих исследований полностью подтверждают эти положения. Кроме того, мы поддерживаем мнение В.Н. Кисленко, 1976; Н.А. Шкиль с соавт., 1999; А. С. Донченко, 1992, 1994; Р.А. Нуратинова, 1998; что чем выше расположен район над уровнем моря и ниже уровень грунтовых вод, тем ниже напряженность эпизоотической ситуации по туберкулезу животных.

Изучение эпизоотологии туберкулеза животных неразрывно связано с определением ареала распространения и выделения микобактерий среди животных и объектах внешней среды. Следует отметить, 80-90 годы в период выявления значительного количества больных туберкулезом животных и регистрации неблагополучных пунктов в Республике Таджикистан постоянно выделяли культуры M.Bovis от реагировавших на туберкулин животных и объектов внешней среды.

В последние годы, по мере улучшения эпизоотической ситуации по туберкулезу крупного рогатого скота, все чаше стали выделяться атипичные микобактерии. Атипичные микобактерии выделяются от реагирующих и нереагирующих на туберкулин животных и объектов внешней среды. Установлены случаи, когда из одной и той же пробы биоматериала от убитых животных выделяли культуру M.Bovis и различные виды атипичных микобактерий. Полученные нами результаты исследований вполне соответствуют данным о возможности смешанной инфекции (M.Bovis + различные виды атипичных мкобактерий) А.И. Алиева с соавт. (1986), И.Т.Нечваля (1986), И.И. Румачик (1987), Н.П. Овдиенко (1991), А.Х. Найманова (1993, 2004), А.С. Донченко, В.Н. Донченко (1994).

Культуры атипичных микобактерий также выделяли из проб объектов внешней среды. Установлено, что из проб объектов внешней среды равнинной зоны, микобактерий выделяли гораздо чаше, чем из проб горной зоны. Так, при бактериологическом исследовании проб биоматериала от 124 проб, реагировавших и нереагировавших на туберкулин коров, нами выявлено 44 культуры атипичных микобактерий. При бактериологическом исследовании 44 проб из объектов внешней среды выделено 15 культур атипичных микобактерий. В итоге всего нами было выделено 59 различных культур атипичных микобактерий.

В соответствии классификации атипичных микобактерии по Раньону по скорости роста и способности к пигментообразованию эти 59 культур атипичных микобактерий были отнесены: к I группе- 1 (1,7 %); к II группе – 9 (15, 2 %); к III группе – 17 (28, 8 %); IV группе - 32 (54, 2 %). То есть наибольшие количество 54, 2 % атипичных микобактерий выделенных на территории Республики Таджикистан, отнесены к IV группе быстрорастущих атипичных микобактерий по классификации Раньона.

Полученные нами данные вполне соответствуют результатам выявления атипичных микобактерий на территории Российской Федерации, где так же выявляют наибольшее количество атипичных микобактерий (59,5 %) IV группы по классификации Раньона (А.Х. Найманов, 2004; Н.С.Боганец, 2006; М.В. Качкин, 2007 и др.).

При дальнейшем изучении выделенных нами 59 культур различных микобактерий различными биохимическими тестами и с учетом культурально - морфологических свойств все культуры микобактерий были распределены по группам и видам микобактерий: I группа- 1 культура M. Marinum ; II группа- всего 9 культур, из них 5 культур- M. Scrofulaceum, 4 культуры - M. Gordonae ; III группа- всего 17 культур, из них 10 культур- M. Avium – Intracellulare, 3 культуры- M. Nonchromogenicum, 2 культуры - M. Triviale, 2 культуры - M. Terrae и IV группа- 32 культуры, из них 17 культур- M. Fortuitum, 8 культур- M.Smegmatis, 4 культуры - M.Flei и 3 культуры - M. Vaccae.

Следует отметить, что распределение культур атипичных микобактерий, выделенных на территории Республики Таджикистан, проведено впервые в дальнейшем могут использованы при проведении противоэпизоотических мероприятий, составлении плана противоэпизоотических мероприятий, при конструировании аллергенов и т.д.

При изучении сенсибилизирующих свойств атипичных микобактерий при подкожном введении культур микобактерий в дозах 1 мг/ мл и 5 мг/ мл мы не установили сенсибилизирующих свойств ни одной из изучаемых культур (M. Marinum, M. Scrofulaceum, M. Gordonae, M. Avium, М. Intracellulare, M. Nonchromogenicum, M. Triviale, M. Terrae, M Fortuitum, M.Smegmatis, M.Flei и M. Vaccae).

Следует отметить, что сенсибилизацию атипичными микобактериями морских свинок мы установили при подкожном заражении в дозе 10 мг/ мл, т.е. при изучении сенсибилизирующих свойств имеет значение и доза вводимой культуры атипичных микобактерий. Указанная закономерность подтверждает сообщение Н.Н. Кошеева, В. Ф. Бордюг, В.Г. Ошепкова, А.Д. Панкратовой, А.Д. Семеченко (2011),что схема введения атипичной культуры микобактерий в дозе 10 и 20 мг / мл вызывает сенсибилизацию у 100 % морских свинок, а в дозе 1 мг / мл не обладает сенсибилизирующими свойствами.

6. ВЫВОДЫ

1.Установлена различная степень неблагополучия по туберкулезу крупного рогатого скота в равнинной и горной зонах Республики Таджикистан. Наиболее неблагополучным были районы и области равнинной зоны: с развитым животноводством, высокой плотностью населения и тесными внутри и межхозяйственными связями.

2.Современная эпизоотическая ситуация по туберкулезу крупного рогатого скота характеризуется снижением количества заболевших животных и неблагополучных по туберкулезу пунктов. Одновременно увеличивается проявление микобактериозов у животных и выявление неспецифических реакций на туберкулин в благополучных по туберкулезу хозяйствах.

3. На современном этапе борьбы с туберкулезом крупного рогатого скота, по мере улучшения эпизоотической ситуации по туберкулезу, все чаше выделяются атипичные микобактерии. Атипичные микобактерии выделяются от реагирующих и нереагирующих на туберкулин животных и объектов внешней среды.

4. От реагирующих на туберкулин животных и из проб объектов внешней среды равнинной зоны микобактерии выделяются гораздо чаше, чем от нереагирующих на туберкулин животных и проб объектов внешней среды горной зоны.

5. Выделение из биоматериала от реагирующих животных и объектов внешней среды атипичных микобактерий, обладающих сенсибилизирующими свойствами, при отсутствии характерных для туберкулеза изменений и отсутствии возбудителя туберкулеза при патологоанатомическом и лабораторном исследовании является показателем неспецифических реакций.

6. Выделение из биоматериала крупного рогатого скота и проб объектов внешней среды различных культур нетуберкулезных микобактерий с разнообразным характером роста и различными культурально- морфологическими, биохимическими и биологическими свойствами требует их идентификации для уточнения эпизоотического статуса поголовья животных.

7. По скорости роста и способности к пигментообразованию выделенные нами 59 культур атипичных микобактерий отнесены: к I группе- 1 (1,7 %); к II группе – 9 (15, 2 %); к III группе – 17 (28, 8 %); IV группе - 32 (54, 2 %) по классификации Раньона.

8. По биохимическим тестам и с учетам культурально- морфологических свойств все культуры микобактерий распределены по группам и видам микобактерий: I группа- 1 культура M. Marinum ; II группа- всего 9 культур, из них 5 культур M. Scrofulaceum, 4 культуры M. Gordonae ; III группа- всего 17 культур, из них 10 культур M. Avium, М. Intracellulare, 3 культуры M. Nonchromogenicum, 2 культуры M. Triviale, 2 культуры M. Terrae и IV группа 32 культуры, из них 17 культур M. Fortuitum, 8 культур M.Smegmatis, 4 культуры M.Flei и 3 культуры M. Vaccae.

9. Сенсибилизирующими свойствами обладают: M. scrofulaceum (II группа); M. Avium – Intracellulare и M. Nonchromogenicum (III группа); M Fortuitum, M.Smegmatis и M. Vaccae (IV группа). Не обладают сенсибилизирующими свойствами: M. Marinum (I группа); M. Gordonae (II группа); M. Triviale и M. Terrae (III группа); M.Flei (IV группа).

10. При изучении сенсибилизирующих свойств атипичных микобактерий на морских свинках, необходимо использовать подкожное введение культур микобактерий в дозе 10 мг / мл.

7. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

В длительно благополучных по туберкулезу, горных зонах Республики Таджикистан проводить аллергические исследования всего поголовья крупного рогатого скота один раз в два года.

В неблагополучных и угрожаемых зонах аллергические исследования поголовья скота проводить 2 раза в год.

Контроль благополучия крупного рогатого скота по туберкулезу проводить послеубойным осмотром скота на мясокомбинатах, скотобойнях и при подворном убое.

8. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Акулов А.В. Сенсибилизирующие свойства и патогенетическая роль атипичных микобактерий // А.В. Акулов, В.С. Тырина // Ветеринария. -1969 - №10- С.43-45

2. Александров Н.А. Выделение кислоустойчивых сапрфитных микроорганизмов из некоторых объектов окружающей среды / Н.А. Александров// Труды Саратовской н.-и. ветеринарной станции. 1967. т. 7. - С. 90-95.

3. Александров Н.А. Внутрикожная проба для дифференцирования микобактерий туберкулеза бычьего и человеческого видов / Н. А. Александров, Г.К. Коваль // Пробл. туб. 1970. №12 – С. 65-68.

4. Аликаева А.П. Ускоренный метод типирования туберкулезных культур / А.П. Аликаева // Труды ВИЭВ.М.,1951.-Т.18. -С. 197-202.

5. Аликаева А.П. Методика исследования кормов, фекалий, почвы и другого материала из внешней среды для выявления микобактерий / А.П. Аликаева // Бюлл. Всесоюз. ин-т эксперим. вет. им. Я.Р. Коваленко. – Вып.34, Методы научных исследований в ветеринарии. -1979. – С.29-30

6. Боганец Н.С. Видовой состав микобактерий в хозяйствах с различной эпизоотической ситуацией / Н.С. Боганец, Б.Я. Хайкин, А.Д. Панкратова // Паразиты и вызываемые ими болезни в Сибири: Тез. Докл. 2-ой науч. конф. Новосиб. отд-ния паразитол. О-ва РАН. – Новосибирск, 1997. – С.17-18.

7. Боганец Н.С. Бактериологическая диагностика туберкулеза животных и ее усовершенствование: Автореф. дисс. докт. вет. наук: 16.00.03/ Н.С. Боганец; В НИИБТЖ.- Омск, - 2006, - 38 с.

8. Бортюк Я.А. Дифференциация возбудителя туберкулеза крупного рогатого скота от атипичных микобактерий в реакции ДНК-ДНК гибридизации: Автореф. дис. канд. биол. наук. 03.00.23/ Я.А. Бортюк; ВИЭВ, М.1991.-25 с.

9. Воеводина ЮА. Микобактериозы крупного рогатого скота в природных условиях Вологодской области : Автореф. дис… канд. вет. наук: 16.00.03 // Ю.А. Воеводина; ФАО ГОУ ВПО Московский государственный университет прикладной биотехнологии – М., 2008. – 27 с.

10. Гаврилова Г.А. Выделение микобактерий из биоматериала от реагирующих на туберкулин животных без подтверждения туберкулеза на вскрытии / Г.А. Гаврилова // Пробл.вет. обеспечения животноводства Дальнего Востока: Тез. Докл. Научн. сессии. – Благовещенск, 1995.- С.13.

11. Гаврилова Г.А. Эпизоотический процесс туберкулеза и лейкоза крупного рогатого скота на Дальнем Востоке и совершенствование методов диагностики: Дисс… доктора вет. наук: 16.00.03 /Г.А. Гаврилова: -Благовещенск, 2005. -372 с.

12. Гребенникова Т.В. Дифференциальная диагностика микобактерий с помощью ПЦР / Т.В. Гребнникова, В.В. Грибовецкий, С.Л. Кальнов и др. // Ветеринария. – 1999. -№3. – С.17-20.

13. Гребенникова Т.В. Молекулярные методы исследования в диагностике туберкулеза / Т.В. Гребенникова, С.Л. Кальнов, А.Д. Забережный и др. // Вет. пат. – 2004. -№1-2 (9). С.92-93

14. Данко Ю. Ю. Распространение потенциально-патогенных микобактерий в природе и среди домашних животных / Ю. Ю. Данко, Т.Б. Ильина // Пробл. туберкулеза. -1983. - №11. –С.15-20.

15. Донченко Н.А. Течение туберкулеза крупного рогатого скота у животных, инфицированных микобактериями комплекса avium-intracellularae: Автореф дисс… канд. вет. наук: 16.00.03 /Н.А. Донченко – Москва. – ВИЭВ.1991.-19 с.

16. Донченко А.С. Диагностика туберкулеза крупного рогатого скота / А.С.

Донченко Н.П. Овдиенко, Н.А. Донченко – Новосибирск, -2004. -308 с.

17. Донченко Н.А. Генетическое типирование микобактерий туберкулезного комлекса с помощью анализа ПДФР ампликонов / Н.А. Донченко, А.С. Донченко, В.И. Семенихин // Ветеринарная патология. 2004.-№1.-(9). -71 с.

18. Донченко Н.А. Усовершенствование средств и методов диагностики и профилактики туберкулеза крупного рогатого скота: Автореф. дисс… докт. вет. наук. – Новосибирск. -2008, -36 с.

19. Донченко А.С. Диагностика туберкулеза животных /А.С. Донченко, В.И. Кисленко, Н.А. Донченко, Н.Л. Тупота, Л.М. Каримова, Н.М. Колычев // Новосибирский государственный университет. – Новосибирск – 2011. – 277 с.

20. Дорожкова И.Р. Микробиологическая диагностика туберкулеза и микобактериозов /И.Р. Дорожкова // Туберкулез (ред. А.Г. Хоменко). – М.: «Медицина», 1982. – С.102-128.

21. Завгародний А.И. Атипичные микобактерии у крупного рогатого сота в лесостепи и Степи Украинской ССР / А.И. Завгородний.: Автореф. дисс. вет. наук: 16.00.03. Харьков, 1987.-19 с.

22. Завгородний А.И. Видовой состав и эпизоотологическое значение туберкулезных микобактерий, выделенных от животных в зоне степи и лесостепи и средства диагностики и борьбы с туберкулезом сельскохозяйственных животных. – Харьков, 1984. – С.58-59

23. Завгородний А.И. Виды микобактерий и их эпизоотологическое значение для крупного рогатого скота / А.И. Завгородний // Вет. медицина /ин-т. Эксперим. и клин. вет. медицины. – Харьков,- 2000, Вып.78, т. 1. – С. 108-113

24. Зыков М.П. Всемирное распространение, выделение и классификация микобактерий / М.П. Зыков // ЖМЭИ.-1966.-№4. - С.115-121

25. Зыков М.П. Потенциально-патогенные микобактерии и лабораторная диагностика микобактериозов /М.П. Зыков, Т.Б. Ильина. – М.: Медицина, 1978.-176 с.

26. Ильина Т.Б. Бактериологическая и биохимическая идентификация микобактерий /Т.Б. Ильина // Метод. Рекомендации. – Л., 1980. -21с.

27. Ильина Т.Б. Бактериологическая и биохимическая идентификация микобактерий /Т.Б. Ильина // Пробл. туб. -1981.-№7.-С.68-73

28. Ильина Т.Б. Дифференциация микобактерий tuberculosis и bovis с помощью салицилового теста и редукции нитратов / Т.Б. Ильина // Пробл. туб.-1987.-№1- С.57-61

29. Иртуганова О.А. Современные возможности микобактериологической лаборатории /О.А. Иртуганова // Клиническая лабораторная диагностика М., 2006.-№1.-С.21-35

30. Ишенко Л. А. Эпизоотология туберкулеза и биологических особенности микобактерий, выделяемых от животных в Краснодарском крае: Автореф. дисс… канд. вет. наук:16.00.02 /Л.А.Ишенко. – Москва. –ВИЭВ.-1975.-17 с.

31. Кадочкин А.М. Изучение атипичных нефтохромогенных микобактерий комплекса авиум –интрацеллюляре и их патогенности для лабораторных животных и крупного рогатого скота: Автореф. дис... канд. вет. наук: 16.00.03 /А.М. Кадочкин. – ВИЭВ М., 1979.-13 с.

32. Кадочкин А.М. Методика серологической идентификации по Шефферу нефотохромогенных микобактерий /А.М. Кадочкин // Бюлл. –ВИЭВ.-1979. В.34. -С. 33-35.

33. Кадочкин А.М. Потенциально патогенные микобактерии, выделенные от людей, больных микобактериозами и их значение для крупного рогатого скота /А.М. Кадочкин, Н.М. Макаревич, А.В. Ткачев – Кузьмин, О.В. Якушева // Труды –ВИЭВ. М., -1984.- Т.61. – С. 62-67.

34. Кадочкин А.М. Дифференциация и идентификация микобактерий / А.М. Кадочкин // Ветеринария. – 1984. - №9. – С. 62-63.

35. Калмыкова М.С. Диагностическая ценность ПЦР-тест-систем при туберкулезе животных: Автореф. дисс… канд. веет.наук: 16.00.03 / М.С. Калмыкова: –ВИЭВ.-М., 2007. -27 с.

36. Кандыбина Т.В. Микобактерии окружающей среды / Т.В. Кадыбина, А.И. Сорокина, Ч.Ю. Поливодина // Сб. научных трудов посвящ. 70-летию Даль.З. НИВИ. – Благовешенск, 2005. – С. 35-40.

37. Каримова Л.М. Виды микобактерий, выделенных от крупного рогатого скота в разных эпизоотических ситуациях по туберкулезу /Л. М. Каримова, Б.Я. Хайкин // Совершенствование систем и методов в борьбе с бруцеллезом и туберкулезом животных. ВАСХНИЛ ВНИИБТЖ. – Новосибирск, 1987. – С.92-98.

38. Каримова Л.М. Характеристика микобактерий, выделенных от крупного рогатого скота, реагирующего на туберкулин в хозяйствах Западной Сибири и их идентификация: автореф. дис…. канд. вет. наук: 16.00.03 / Л.М. Каримова. – Омск, 1993. – 18 с.

39. Кассич Ю.Я. Изучение сенсибилизирующих свойств атипичных микобактерий / Ю.Я. Кассич, В.А. Кочмарский, П.М. Тихонов, А.Е. Тесля, А.М. Харченко, А.И. Завгородний, Р.Я. Григорьев // Ветеринария.- 1985. -2. С. 29-30.

40. Казиахмедов З.А. Совершенствование бактериологической диагностики туберкулеза: Автореф. дисс… канд. вет. наук: 16.00.03 / З.А. Казиахмедов, ГНУ Всерос. инстит. экспер. ветеринарии – М., 204. -22 с.

41. Касьянова Е.А. Оптимизация комплекса видовой идентификации микобактерии: Автореф. дисс…. канд. вет. наук: 06.02.02/ Е.А. Касьянова; ГОУ ВПО Московский Гос. универ. Прикладной биотехнологии – М., 2010.-29 с.

42. Качкин М.В. Комплексная эпизоотологическая оценка проявления туберкулиновых реакций у животных на территориальном и популяционном уровне с использованием информационных технологий: Автореф. дисс…. канд. вет. наук: 16.00.03/ М.В. Качкин, Новосибирск, 2007. – 22 с.

43. Ковалёв Г. К. Идентификация и дифференциация микобактерий / Г.К. Ковалев // Ветеринария. – 1992. -6. –С. 24-25.

44. Козулицына Т.И. Современные методы имдентификации кислоустойчивых микобактерий /Т.И. Козулицина, Н.М. Макаревич, А.М. Кадочкин // Материалы Всесоюз. науч. конф. – Омск, 1980. –С.65-68.

45. Козлов Н.Н. Роль атипичных микобактерий комплекса авиум-интрацеллюларе в возникновении аллергических реакций и патоморфологических изменений у свиней в естественных условиях и в эксперименте / Н.Н. Козлов // Мат. Всесоюзн. науч. конф. ВАСХНИЛ. –Омск, 1980. – С.162-164.

46. Курандо Е.Э. Совершенствование бактериологической диагностики туберкулеза животных в условиях изменяющийся эпизоотической ситуации: Автореф. дисс. канд. биол. наук: 06.02.02. /Е.Э. Курандо; ФГУ Всер. госуд центр качества и станд. лекарств. средств для животных и кормов. М., 2010. -25 с.

47. Корнева И.Н. Индикация и идентификация микобактерий туберкулезного комплекса на основе амплификации области SEN X3-reg X3 И.Н. Корнева, О.И. Скотникова, А.М. Мороз, В.В. Демкин // Сб. тр. 4 Всероссийской науч. –практ. конф. «Генодиагностика инфекционных заболеваний».- М., 2002. – С. 18-19.

48. Косенко В.И. О патогенности M. scrofulaceum для морских свинок / В.И. Косенко, Н.Г. Толстенко // Труды ВИЭВ, 1991; Т.69.-C. 123-126.

49. Кочмарский В.А. Изучение биологических свойств у культур атипичных микобактерий, выделенных от реагирующнго на туберкулин крупного рогатого скота / В.А. Кочмарский // Ветеринарна медицина. Межведомовственный тематический нучный сборник. – Харьков, 2005.-Т.1. – С.584-587.

50.Кошеев Н.Н. Новый способ определения сенсибилизирующих свойств атипичных микобактерий / Н.Н.Кошеев, В.Д.Бордюг, В.Г.Ощепков, А. Д.Панкратов, А.Д.Сленченко// Мат.межд.научно- практ.конф.Омск.-2011.-С.102-105.

51. Кудяков В.Н. Атипичные микобактерии выделенные из объектов внешней среды и молока/ Н,В Кудяков //Бюл. ВИЕВ.- М., 1983.-Вып.50.-С.22-24.

52. Кудяков В.Н. Атипичные быстрорастущие микобактерии и их роль в патологии крупного рогатого скота:

Автореферат. дис… канд. вет. наук: 16.00.03/ В.Н. Кудяков, ВИЕВ.- М., 1984.- 24 с.

53. Лазовская А.Л. Быстрорастущие микобактерии, вызывающие микобактериозы у людей и животных/ А.Л. Лазовская, Л.В. Смирнова, Т.В. Гончарова// Успехи соврем. биол.-1989.-Т.107.-№1. – С. 121-130.

54. Лазовская А.Л. Патогенные и условно патогенные микобактерии А.Л. Лазовская, И.Н. Блохина// Горький-1976.-113 с.

55. Лазовская А.Л. Токсономия микобактерий туберкулеза / А.Л. Лазовская// В кн.: Вопросы эпизоотологии, диагностики и мероприятия по ликвидации туберкулёза и бруцеллеза животных.- Новосибирск.-1987.-С. 78-84.

56. Лазовская А.Л. использование метода газовой хроматографии жирных кислот в таксономии микобактерий / А.Л.Лазовская, Л.М. Пинчук// современные аспекты систематики микроорганизмов.- Алма-ата, -1985.-С.30.

57. Лазовская А.Л. Идентификатсия медленнорастущих микобактерий с помощью систем индикаторных бумажных (СИБ) / А.Л. Лазовская, Л.С. Финкельштейн, С.А.Вольникова / Профилактика и лечение инфекционных и инвазионных заболеваний сел.хоз. животных в Нечерноземье- Нижний Новогород, -1988.- С.26-29.

58. Литвинов В.И. Нетуберкулезные микобактерии/ В.И.Литвинов, М.В. Макарова, М.А.Краснова. М.:МНПЦБТ.-2008.-256 с.

59. Лотоцкая Р.А. К вопросу о нетуберкулезных микобактериях и микобактериозе/ Р.А.Лотоцкая, Е.Е.Кузнецова, В.М.Саулите и др.// Пробл. туб.- 1979.-№9.-С.58-61.

60. Макаревич Н.М. Нетуберкулезные микобактерии, выделенные на территориях СССР/ Н.М. Макаревич, Т.Б. Яблокова, Т.Б.Ильина и Тез. докл. 9 Всесоюзн. съезда фтизиаторов.- Кишинев,-1979.-С.181-182.

61. Макаревич Н.М. Совершенствование методов выделения и диагностики кислотоустойчивых микобактерий /Н.М. Макаревич, Я.А.Благодарный, А.М.Кадочкин и др. //Труды ВИЕВ.-М., 1985,-Т.63.-С.26-31.

62. Макарова М.В. Идентификация M.bovis, M.avium, M.kansasii, M.smegnatis с помощью моноспецифических сывороток: Автореферат.дис… канд. биол. наук: 16.00.03/ М.В.Макарова-ВИЕВ.-М., 1991.-23 с.

63. Макарова М. В. Нетуберкулезные микобактерии: классификация, эпидемиология, патология у людей и животных, лабораторная диагностика (обзор литературы) /М.В.Макарова // Проблемы туберкулеза и болезней лёгких.-2007.-№10.-С.7-17.

64. Мартма О.В. Атипичные микобактерии и их диагностическое и эпизоотическое значение при туберкулезе крупного рогатого скота: Автореф. дисс… докт.вет.наук..-16.00.03/ О.В. Мартма //Тару., 1971.-46 с.

65. Мартма О.В. О возбудителях и течении микобактериоза / О.В. Мартма, К.К. Тяхнас// В кн.: Туберкулез крупного рогатого скота и меры борбы сним.- Новосибирск.-1986.-С.78-82.

66. Мартма О.В. Современное состояние проблемы атипичных микобактерии/ О.В. Мартма// Ветеринария.-1982. - №5. - С.22-24.

67. Мартма О.В. Класификация микобактерий/ О.В. Мартма, Н.П. Овдиенко, А.В. Ткачев-Кузмин // Туберкулез сельскохозяйственных животных.- М.: Агропромиздат,- 1991.-С.9-17.

68. Мартма О.В. Патогенность и вирулентность различных видов микобактерий / О.В. Мартма, Н.П.Овдиенко, А.В.Ткачев-Кузмин // Туберкулез сельскохозяйственных животных.- М.: Агропромиздат,- 1991.- С.28-32.

69. Мирзоев Д.М. Туберкулез животных в условиях Юго-Восточной зоны Центральной Азии: Автореф..дисс. док.вет.наук: 16.00.03/Д,М.Мирзоев: ГНУ Всерос.научно-исслед. институт экперт. ветеринарии. 1997. 50 с.

70. Найманов А.Х. Полимеразная цепная реакция при диагностике туберкулеза крупного рогатого скота / А.Х. Найманов, Н.П. Овдиенко, Е.П.Осипова и др.// Ветеринарная патология.- 2004.-№1-2(9).-С.96-99.

71. Найманов А.Х. Проблемы диагностики и профилактики туберкулеза крупного рогатого скота в современных условиях / А.Х.Найманов// Ветеринарная патология.-2004.-1-2(9).-С.18-23.

72. Найманов А.Х. Новые пути распространения и сенсибилизации крупного рогатого скота нетуберкулезными микобактериями/ А.Х. Найманов, Н. Г. Толстенко, В.С.Суворов, О.В.Якушева // Труды ВИЭВ.-2010.-Т.76.-С.71-80.

73. Наставление по диагностике туберкулеза животных.- М., 2002.-С.63.

74. Нуратинов Р.А. Туберкулез крупного рогатого скота в Республиках Северного Кавказа и Калмыкии: Автореф. дисс…докт.вет.наук; 16.00.03/ Р.А.Нуратинов, Москва- 1998. -.35 с.

75. Нуратинов Р.А. Основные показатели проявлений эпизоотического процесса туберкулеза крупного рогатого скота Республиках Северного Кавказа и Калмыкии // Р.А.Нуратинов. Тез.докл.Международ, науч-практ.конф. Актуальные вопросы диагностики, профилактики и борьбы с болезнями с\х животных.- Ставрополь.- 1999.- С.110-113.

76. Обоева Н.А.Оптимизация методов контроля благополучия стад крупного рогатого скота по туберкулезу: Автореф. дисс….канд.вет наук; 16.02.02 / Н.Д.Обоева.- Новосибирск.- 2010. – 18 с.

77. Овдиенко Н.П., Эпизоотология и диагностика туберкулеза крупного рогатого скота в условиях интенсификации животноводства: Автореф. дисс….док.вет.наук; 16.00.03./Н.П. Овдиенко, ВИЭВ, Москва.- 1990.- 49 с.

78. Овдиенко Н.П. Видовая принадлежность микобактерий, выделяемых от крупного рогатого скота и из объектов внешней среды/ Н.П.Овдиенко, В.И.Косенко, А.Х.Найманов и др.// Проб. туб.- 1990.- № 2.- 46-48 с.

79. Овдиенко Н.П. О патогенности атипичных микобактерий для лабораторных животных / Н.П. Овдиенко, В. И.Косенко, Н.Г.Толстенко и др.// Ветеринарная патология.- №1-2(9).- 2004.-С.150-153.

80. Овдиенко Н.П. Идентификация различных видов микобактерий методом иммуноферментного анализа / Н.П. Овдиенко, А.Х. Найманов, М.В.Головченко и др.// Инфекционная патология животных: Сб.науч. тр./ ВНИИБТЖ.-Омск,-2001.-Юбил.вып.-С.171-172.

81. Овдиенко Н.П. Никакого перемирия в борьбе с туберкулезом / Н.П.Овдиенко, А.Х.Найманов, В.А.Ведерников // Ветеринарная газета.- 2002.-№ 6.-С.4-5.

82. Оттен Т.Ф. Микобактериоз / Т.Ф.Оттен, А.В.Васильев.- СПб: Медицинская пресса, 2005.- 224 с.

83. Оттен Т.Ф. Характеристика нетуберкулезных микобактерий- потенциальных заболеваний человека / Т.Ф.Оттен// Проб.туб.- 1994.-№ 3.-С.56-59.

84. Оттен Т.Ф. Методы ускоренной бактериологической идентификации нетуберкулезных микобактерий/ Т.Ф.Оттен // Туберкулез и экология.- 1997.- №2.-С.29-31.

85. Ошепков В.Г. О значении симультанной аллергической пробы при диагностических исследованиях крупного рогатого скота на туберкулез/ В.Г.Ощепков, Л.А.Таллер, Н.И.Овсянов, Г.М.Дюсенова// Сб. науч. трудов ВНИИБТЖ.-2003.- С.20-26.

86. Параскевов Г.К. Причины сенсибилизации крупного рогатого скота к туберкулину и мероприятия в хозяйствах в зависимости от вида микобактерий: Автореф. дисс….кан. вет. наук: 16.00.03/ Г.К.Параскевов // Тбилиси.- 1988. – 18 с.

87. Прокопьева Н.И. Основные проблемы диагностики туберкулеза крупного рогатого скота в Республике Саха (Якутия) / Н.И.Прокопьева // Сб. науч.труд.ВНИИБТЖ.-2003.-С.17-20.

88. Прокопьева Н.И. Особенности контроля эпизоотического процесса туберкулеза крупного рогатого скота в экспериментальных условиях Якутии: автореф. дисс…док. вет. наук: 16.00.03/ Н.И.Прокопьева; Новосибирск.-2004.-35 с.

89. Прокопьева Н.И. Оценка эффективности контроля благополучия стад по туберкулезу крупного рогатого скота в Якутии / Н.И.Прокопьева, Г.П.Протодьякова // Вестник ветеринарии.-2013.-№ 65.-С.7-9.

90. Скрипник А.В. Молеклярно-генетическая дифференциация микобактерий, выделенных в Украине и их физиологические взаимосвязи: Автореф. дисс…. канд. вет. наук: 16.00.03 /А.В. Скрипник – Харьков – 2007.- 19 с.

91. Скрягина Е.М. Выявления микобактерий туберкулеза различными методами /Е.М. Скрягина, О.М. Залуцкая, А.Рот и др. // Проблемы туберкулеза. – 2001.-№3.-С.56-57.

92. Степаншина В.И. Идентификация нетуберкулезных микобактерий с помощью молекулярно-биологических тестов /В.И. Степаншина, О.Ю. Манзенюк, И.Г. Шемякин, О.В. Коробова // ЖМЭИ, 2000,-№6.-С.61-65.

93. Судаченков В.В. Сенсибилизирующие свойства микобактерий 1,2 и 3 группы по Раньону / В.В. Судаченков // Ветеринария; 1969.-9.-С.28-31.

94. Судаков М.П. Роль микобактерий комплекса авиум-интрацеллюляре в этиологии микобактериозов // Тез. Докл. 11 респ. Конф. Эстонской ССР по фтизатрии и пульмонологии.- Таллин, - 1988.-С.112-113.

95. Ткачев-Кузьмин, А.В. Роль некоторых видов атипичных микобактерий в сенсибилизации крупного рогатого скота к туберкулину /А.В. Ткачев-Кузьмин: / Бюллетень ВИЭВ.-М.,-1981.-№43.-С. 27-29.

96. Ткачев А.В. Серологическая идентификация атипичных микобактерий / А.В. Ткачев, А.М. Кадочкин // Бюллетень ВИЭВ.-1983.-№50.-С.24-25.

97. Толстенко, Н.Г. Патогенные свойства некоторых видов микобактерий, выделенных от животных и объектов внешней среды: Автореф. дис… канд. вет наук: 16.00.03 /Н.Г. Толстенко; Всерос. научно-исслед. институт экспер. ветеринарии. – М., 2006.-27 с.

98. Тырина В.С. Микобактерии птичьего типа, выделенные от крупного рогатого скота и овец, их свойства и идентификация. / В.С. Тырина. // Доклады ВАСХНИЛ. – 1968.-№10.-С.34-35.

99. Тырина В.С. Сравнительное изучение различных групп кислоустойчивых микобактерий и методов их дифференциации: Автореф. дисс… канд. биол. наук: 03.096/В.С. Тырина; ВИЭВ.М.,-1969.-20 с.

100. Турланов К.М. Видовая принадлежность микобактерий, выделенных в условиях мясо-молочных предприятий /К.М. Турланов, Э.В. Сидоркина// Вопросы взаимосвязи туберкулеза человека и животных.-Алма-Ата.-1981.-С.174-179.

101. Тяхнас К.К. Изучение парааллергических туберкулиновых реакций и вызывающих их атипичных микобактерий у молодняка крупного рогатого скота: Автореф. дисс… док-а вет. наук: 16.00.03 / К.К. Тяхнас;-Таллин, 1975.-37 с.

102. Тяхнас К.К. Результаты идентификации изолированных от крупного рогатого скота атипичных микобактерий // К.К. Тяхнас.-Таллин.-1978. - 69 с.

103. Финкель Е.А. Биологический метод исследований при туберкулезе /Е.А. Финкель, Л.В. Михайлова.-Фрунзе: «Кыргыстан», 1976.-160 с.

104. Хоменко А.Г. Опыт коллективного изучения нетуберкулезных микобактерий /А.Г. Хоменко, Н.М. Макаревич, М.Кубин и др. / Проблемы туберкулеза. – 1981. -№8.-С.62-66.

105. Andres J. Die Bemuhungen zur Abklarung fraglieher Tuberkulinreaktionen beim Rind. – Scheis. Arch. f. Thk., 1960, 102, 10. - P. 531-541.

106. Baldwin E.P. Nonpathogenic acid-fast bacilli. – Amer. Rev. Tuberc., 1942, 45, 6. - P. 756.

107. Balint J., Szabo J. Atypische Mykobacterien bei “Urogenitatuberkulose”. – Prex. Pneumol., 1972, 26, 7-P. 404-408.

108. Bauman R., Kubin G., Rittershaus E. Infektionsversuche mit Mycobacterium mit Micobacterium suis. – Wien. tierastl. Wscher., 1957, 44, 11, P. 650-655.

109. Bauman R., Rittershaus E. Tuberkulinierungs versusche und mit Mycobacterium suis infizierten Meerrschweinchen. – Dtsch. tierasitl. Wschr., 1957, 64, 6, P. 123-124.

110. Bederke G. Die apathegenen Mycobacterien ats storungsguelle der Tuberkulinreaktion. – Mh Tierheilk. Die Rindertuberculose, 1954, 3, P. 201.

111. Beerwerth W., Schurmann J. Zur Okologie der Mykobacterien. – Zbl. Bekt. I. Orig., 1969, 211, P. 55-69.

112. Beerwerth W., Popp K. Zur episootologischen Bedeutung der Sagemehleinsten fur das Auftrenen der Schweinetuberculose. – Zbl. Veter. – Med., 1971, 18, 8, P. 634-645.

113. Beerwerth W. Mykobacterien in Viehtranken und Oberflachengewassen. – Dtsch. Tierarztl., Wschr., 1973, 80, P. 398-401.

114. Beerwerth W., Kessel V. Mykobacterien in der Umwelt von Mensch und Tier. – Zbl. Bakteriol. J. Reiche. A., 1976, 235. P. 177-183.

115. Bhowmik M., Jier P. Studies on the pathology of chronic lesions in the mammary glands of buffaloes (Bufalus bufalis). I. Ackinmycosis. Nocardiosis and lesions simulating tuberculosis. – Indian Veterinary Journal, 1977, 54, 5. - P. 342-346.

116. Bogdandy E. Szabo J. Mycobacterium fortuitum sltal okozott, gombaval szovodott cavernas tudomegbetegedes esete. – Tuberculosis, 1974, 27, 12, P. 369-371.

117. Bojalil L., Cerbon J., Trujillo A. Adansonian classification of mycobacteria. – J. Gen. Microbiol., 1962, 28. - P. 333-346.

118. Бокун А.О., Злонкевич Я. Д. Materialin einer experimentellen Infektion von Rindern mit saurefesten Mykobacterien verschiedenen Typs. Tezy dopovidej XXI neukovoi konferencii po pidaumkach naukovododidnol raboty instytutu Za 1964 rik: 162-163, - Ref. Landw. Zbl. abt. IV. 1967, 1. P. 109.

119. Bonicke R. Die Klassifizierung “atypischer” Mykobakterien durch Bestimung ihrer unterschiedlichen acylamidatischen Stoffwechselleistungen. – Der Tuberkulolosearzt., Stuttgart, 1960, H.4. P. 209-216.

120. Bonicke R., Juhasz S. Beschreibung der neun species Mycobacterium vaccae. n. sp. – Zbl. Bakt. I. Abt. Orig., 1964, 192, P. 133-135.

121. Bonicke R. Die Differenzierung “etypischer” Mycobacterien. – Zbl. Bakt. I. Abt. Orig 1967, 205. P. 260-268.

122. Bonicke R. Identification of mycobacteria by biochemical methodes. – Bull. Inst. Union T.b.c., 1962, 32. - P. 13-68.

123. Bonicke R. Der zeitigen Stand der Klassifizierung atypischer Mykobacterien mit biohemischen Methoden. – Z. Tuberk., 1967, 127, 1/2, P. 13-21.

124. Branderburg H. Uber die Verwendbarkeit von Mausen in der Tuberculolose-Diagnostik. – Zbl. Bakt. I. Orig., 1960, 177, 1, P. 72-94.

125. Buxton G., Glover R. (1939). – Cit. Patarson A. In the incidence and causes of tuberculin reactions in nontuberculous cattle. – Fortschritte der Tuberkuloseforschung, 1965, 7. - P. 101.

126. Canman A. The tuberculin test in guines pigs and cattle. The allergic response of animals to tuberculin and extachts of nonpathogenic acid-fast bacteria. Onders-tepport. – J. Vet. Science, 1944, 19. - P. 29.

127. Chapman J. The anonymous mycobacteria in human disease. – Springfield, C.C. Thomas, 1960.

128. Chapman J., Bernard J., Speight M. Isolation of Mycobacteria from raw milk. – Am. Rev. Resp. Dies., 1965, 3. - P. 351-355.

129. Chusid M., Parrillo J., Fauci A. A Chronic granulomatous disease diagnosic in a 27-year-old man with Mycobacterium fortuitum. – J. Am. med. Ass., 1975, 233, 12. - P. 1295-1296.

130. Cotrina N. Remov S., Senehez J. Rstudio de las respuestas paralergicas de un rebano libre de tuberculosis bovina. – Revita Cubana de Ciencias Veterinarias, 1977, 8, 2. - P. 55-61.

131. Crawford A. Tuberculin sensitization in guine pigs caused by various scid-fast organisms. – J. Am. Vet. Med. Assoc., 1926, 69. - P. 579-588.

132. Crawford A. Studies in sc-called “skin-lesion” tuberculoss. – Am. Vet. Med. Assoc., 1928, 73, 2. - P. 216-222.

133. Cruz J. Mycobacterien fortuitum um novo bacilo acido-resistente patogenice para o human. – Asta Med. Rio de Yaneiro. 1938, 1. – P. 297.

134. Csillag A. Morphological and biochemical features of “atypical” mycobacteria. – J. Gen. Microbiol., 1961, 24, 2. - P.261-271.

135. Daimes L., Austin M.A. study of sc-called skin-lesion and no vieible-lesion tuberculin-reacting cattle. – J. Am. Vet. Med. Assoc., 1932, 80, 3. - P. 414-436.

136. Delchow W., Nassal J. Mycobacteriose beim Schwein durch Sagemehleinstern. – Tierarztiich Umschau. 1979, 34, 4, - P.253-262.

137. Devuldex B., Debruine A., Taquet A., Gernez-Rieuch Ch. Микобактериозы человека, клинические формы и лечение. Труды XXI Международной конф. По туберк., М., 1972. – P. 135-147.

138. Diernhofer K. Die unspesifischen Tuberculinreactionen beim Rind Herausgegben von Bundesministerum fur Landund Toretwirsthaft. – Veterinarverwaltung. Wien, 162.

139. Podstad F. Tuberculin reactions in bulls and bears sensitized with atypical mycobacteria from sawdust. – Asta Weter. Scand., 1977, 18, 3. - P. 374-383.

140. Freerksen D., Lauterbach D. Uber die Auslosbarkeit von Tuberculin-Reaktionen nach Verfutterung atypischer Mykobakterienstamse beim Rinde. – Zbl. Bakt. I. Orig., 1960, 180, 2, P. 217-220.

141. Freerksen E. Die segenanten atypischen Mycobacterien. – Klin. Wschr., 1960, 38, P.297-308.

142. Freerksen E., Lauterbach D. Zur Bedeutung und Differenzierung von sog “Unspezifischen” Tuberkulinreactionen. – Zbl. Vet. Med., 1961, 8, 2, P.158-174.

143. Freerksen E. Kolloqimi Die sog. “atypischen” Mykobacterien. – Beitr. Klin. Tuberk., 1962, 125, P. 379-398.

144. Gerl H. Presence of atypical in automatic drinkere for Livestock. – Treic. Univ. Berlin, 1972. - P. 57.

145. Geurden L., Devos A., Lambelin G., Staelens M. Etude de souches congolaises de mycobacteries “atypiques” d’origine bovine. – Zbl. Bact. Parasit. Inf. Hung., 1963, Bd. 190, 2. - P. 229-234.

146. Girard W., Ahn C., Light R. Epidemiology of atypical mycobacterial diseas in Texas, Lousiana. – Bull. Inter. Un. Tuberc., 1976. 51, 1. - Р. 263-266.

147. Gordon R., Smith M. Rapidly growing, acid-fast bacteria. – J. Bact., 1953, 66. - P.41-48.

148. Green H. Weibridge PPD tuberculins. – Brit. Veterin. J., 1946, 102. - P.267-278.

151. Gribets A., Damsker B., Bottone E., Kirschner P., Teirstein A. Solitary pulmonary nodules due to nontuberculous mycobacterial infection. – Amer. J. Med., 1980, 70, 1. - P.39-43.

149. Hagan W. The no-lesion case problem in the tuberculosis eradication campaign. – Corn. Vet., 1931, 2. - P.163-176.

150. Hagan W., Levine P. The Pathogenicity of the saprophytic acid-fast bacilli. – J. Am. Vet., 1931, 2. - P.163-176.

151. Hastings E., Besch B., Thompson J. The sensitization of cattle to tuberculin by other than tubercle bacilli. – Am. Rev. Tuberc., 1930, 22. - P. 218-225.

152. Hauduroy P. Bacilles tuberculeux, paratuberculeux et mycobacteries anormales. – Presse med., 1961.

153. Haunduroy P. Anormal mycobacterie and their relations to human pathology. – III Congress of the Hungarian Assosiation mycobacteriologist. Budapest, 1961, 1. - P. 201.

154. Hedvall E. Atypical acid-fast bacilli. – Asta tuberc. Scand., 1960, 38. - P.248-260.

155. Heeschen W., Kruger K. Zur Frage derAnwendung einer erweiterten Tuberkulindiagnostik in der Differential-diagnose “unspesifischer” Tuberculinreaktionen. – Mh. Tierheilk., Sonderteil, Rindertuberk., Brucellose, Laukose, 1963, 12, 4. - P.64-75.

156. Heide L. Grigat E., Fuchs H., Boretius J., Wendt K. Atypische Mycobacterien als mastitiserreger in einer Milchviehanlage. – Monatshefte fur Veterinarmedizin. 1978, 33, 5, P. 318.

157. Hoblinger A. Uber den Einfliss apathogenen Mykobacterien auf die Tuberculin-reaction. – Milchwissenschaft. Bern., 1955, 5. P. 318.

158. Hobby G., Redmoud W., Runyon E., Shaefer W., Wayne L., Wichelhausen R. A study on pulmonary disease associated with mycobacteria other than Mycobacterium tuberculosis. Identification and characterization of the mycobacteria. XVIII. A report of the Vterians Administration – Armed Torcec ecoperative study. – Am. Rev. Resp. Dis., 1967, 95. - P.954-971.

159. Janoviec M. Okreslenie zjadliwosci szczepow kwasoopornych taw. Atypowych dia myszek bialych. – Cruzlica, 1965, 33. - P.571-576.

160. Janovievic M. Atypowe pratki w patologii gruslicy ludsi I zwierzat. – Med. Weter., 1972, 28, 9. - P.513-519.

161. Jones R., Jenkins D. Mycobacteria isolated from soil. – Canad. J. Microbiol., 1965, 11, 2. - P.127-133.

162. Jones R., Yenkins D., Hsu K. Raw milk as a source of mycobacteria. – Cenad. J. Microbiol., 1966, 12, 5. - P. 979-984.

163. Jonson H., Baisden L., Frank A. The relationship of the allergens of M. paratuberculosis, M. tuberculosis var. avium, bovis and humanus, and M. phlei. – Am. J. Vet. Res., 1949, 10, 35. - P.138.

164. Joubert L., Oudar J. Intertransmissibilite et prophylaxie des tuberculosis humanes et animals. Le problem acuel des tuberculosis humanes et animals. Le problem acuel des mycobacterioses atypiques. – Goz. med. Fr., 1966, 73, 19. - P. 3603-3616.

165. Jurkovic M., Hejny J. Mycobacterium fortuitum pri pl’usnej mykobakterioze. – Stud. Pneumol. Phtiseol. cech., 1974, 34, 8. - P.533-535.

166. Kantor J., Jimenez Y. Mycobacterias silsdes de ganglias bovines en la provineis de Buenos Aires. – Revista de Medicina Veterinaria, Argentina, 1977, 58, 5-6. – P.381-384.

167. Kappler W. Zur Differenzierung von Mycobacterien mit dem Phosphamase-Test. – Beitr. Klin. Tuberk., 1965, 130, P.223-226.

168. Kappler W. Zur Taxonomic der Gattung Mykobacterium. I.Klassifizierung schnell wachsender Mycobacterien. – Z. Tuberk., 1968, 129, 5/6, P.311-319.

169. Karlson A., Feldman W. Studies on an acid-fast bacterium. Frenquently present in toneilar tissue of swine. – J. bacter., 1940, 39, 4. - P.461-472.

170. Kazda J. Isolierung und Beschreibung einer Mycobacterium Species, der Erregers einer Paraalergie gegenuber Tuberculin bei Geflugel. – Zbl. Bakt. I. Orig., 1966, 199, 4. P. 461-472.

171. Kazda J. Mykobakterien in Trinkwassez als Ursache der Paraallergie gegenuber Tuberkulin bei Tieren. I. Mitteilung paraallergiscshe Reaktionen bei Geflugel. – Zbl. Bakt.. I. Orig., 1967, 203, 1, P. 92-101.

172. Kestle D., Abbott V., Kubica C. Differential indentification of mycobacteria. II. Subgroups of groups II and III (Rynyon). With different clinical significance. – Am. Rev. Resp. Dis., 1967, 95. - P.1041-1052.

173. Kilburn J., Silcox V., Kubica G. Differential indentification of mycobacteria. V. The tellwrit reduction test. – Am. Rev. Resp. Dis., 1969, 99. - P. 94-100.

174. Kochne G., Maddux R., Britt J. Rapidly growing mycobacteria associated with bovine mastitis. – Amer. J. Vet. Res., 1981, 42, 7. - P.1238-1239.

175. Konyha L. Mycobacteria isolated from exotic animals. – J. Am.Vet. Med. Assoc., 1977, 170, 9. - P.987-990.

176. Kovacs N. Kolloqimi Die sog. “atypischen” Mykobakterien. – Beitr. Klin. Tuberc., 1962, 125, P. 349-354.

177. Kovacs N. Nichtklassifizierte Mykobakterien. – Zbl. Bakt. I. Orig., 1962, 184, 1/3, P. 46-58.

178. Kubica G., Pool G. Studies on the catalase activity of acid-fast bacilli. – Am. Rev. Resp. Dis., 1960, 81. - P.387-391.

179. Kubica G., Boam E., Palmer J., Rigdon L. The isolation of unclassified (Atypical) acid-fast bacilli from soil and water samplas colleted in the state of Georgia. – Am. Rev. Resp. Dis., 1961, 84, 1. - P.135-136.

180. Kubin M., Matejka M. Atypicka mycobakteria u havranu (Corvus frugilegus). – Veterinari Med., 1967, 12,9. - P.499-504.

181. Kuls O. Viskyt mykobakteric v roznych vodnych zdrojoch a ich differenoovante. – Stud. Pneumol. Phtiseol. Cech., 1975, 35, 4, P.262-264.

182. Kuls O., Pultznerova A., Galovie S. Sidovanie mykobakterii v rosnych vod nych zdrojoch stredoslovenskej oblasti. – Stud. pneumol. phtiseol. rech., 1975, 35, 4. - P.258-261.

183. Kushner D., Memillian S., Senderi M. Atypical acid-fast bacilli. II. Mycobacterium fortuitum. Bacteriological characteristics and pathogenicity for Laboratory animals. – Am. Rev. Tuberc., 1957., 1957, 76, 1. - P. 108.

184. Kuska J. Vyskyt atypickych mykobakterii vo vodnom proatredi. – Stud. pneumol. phtiseol. cech., 1973, 33, 5. - P.329-334.

185. Lesslie J. Tuberculosis in attested herds caused by the human type tubercle bacillus. Vet. Rec., 1960, 72, 12. – P. 218-224.

186. Levit T., Terracina S., Karman S., Levit R., Tarnok J. Ein Fall von Lungenerkrankunge, hervorgerufen durch Mycobacterium borstellense. – Prex. Pneumol., 1973, s.27, 1, P.22-27.

187. Linell P., Norden A. Mycobacterium balnei. A new acid-fast bacillus occuriing swimming pools and capable of producing skin lesions in humans. – Asta tuberc. Scand., Suppl., 1954, 33. - P.1-84.

188. Marks J., Troloppe D. A study of the “anonymous” mycobacteria. I. Introduction, colonial characteristics and morphology: growth rates, biochemical test. – Tubercle, 1960, 41.- P.51-62.

189. Maisener G. Untersuchungen in atypischen Mycobacterien. I. Vergleichende bakteriologische untersuchungen sie ihrer Erkenung und Gruppeneinteilung. – Beitr. Klin. Tuberk., 1959, 120, P. 377-387.

190. Meisaner G. Untersuchungen in atypischen Mycobacterien. II. Vergleichende tierexperimentiall untersuchungen zur Frage ihrere Pathogenitat und Virulenz. – Beitr. Klin. Tuberk., 1959, 121, P. 365-380.

191. Meisaner G. Atypische Mykobakterien. III. Aviare und aviumahuiche Stamme. – Zbl. Bakt., I. Abt. Orig., 1960, 180, P. 510-521.

192. Meisaner G. Erkrankungen des Menschen durch M. kansasii und Mykobakterien der aviaren Gruppe. In: Infektions-krankheiten und ihre Erreger. Ed.4: Mykobakterien und mykobakterielle Krancheiten. – Teil IV. VEB Gustav Fischer Verlag, Jena, 1970, P.239-280.

193. Mellado Pollo A. Tuberculosis y mycobacteriosis en el genado bovino de la provincial de Santander. – Rev. sanid e hig. Publica, 1977, 51, n 9-10. - P.1009-1049.

194. Meyn A. Uber die intracutane Tuberculinprobe beim Rinde. – Mn. F. Tierheilkd. Die Rindertuberculose. 1953, P.17.

195. Meyn A. Unspezifische Tuberkulinreactionen bei Rinde. – Wien tierarztliche. Machr., 1961, 48, 9, P. 711-724.

196. Minett F. Avian tuberculosis in cattie in Great Britain. – J. Comp. Path. and Therap., 1932, 45. - P.317-330.

197. Mitchell M., Huft J., Thoen C., Himes E., Howder J. Swine tuberculosis in south Dakota. – J. Am. Vet. Med. Assoc., 1975, 167, 2, P.152-153.

198. Monet P., Augier E., Heinrich A., Curtet R., Zenglein C., Boch F. Stude d’un foyer de thelite nodulsire daus le Bas-Rhin. Recucil. – Med. Veterin., 1968, 144, 5. - P.435-449.

199. Mornez J., Guillet Y., Guerin J., Kalb J., Fougerat J. Lung disease due to Mycobacterium fortuitum. – Lancet, 1981, 1, № 8820. - P.614-624.

200. Muller H., Kollman O. Zur Frage der Entstehung unspezifischer Tuberkulinreaktion. – Tierarztliche Umschau. 1956, 11, 6, P. 212-214.

201. Nagayama Y., Nagayama H., Takeya K. Studies of the relationship between Mycobacterium fortuitum an Mycobacterium runyonii. – Am. Rev. resp. Dis., 1970, 101, 4. - P.558-568.

202. Niaz N., Siddio S. Isolation and identification of mycobacteria from cattle slaughtered in Pakistan. – Vet. Rec., 1979, 104, 2. - P.478-480.

203. Nyiredy J., Hejj L., Tuboly S. The role saprophytic mycobacteria in elictiting tuberculin sensitivity in cattle. – Asta Microbiol. Acad. Soi. Yung., 1967, 14, 1. - P.102-103.

204. Nyiredy J., Hejj L., Tuboly S. Die Role der saprophytischen Mykobacterien bei der Ausiosung der Tuberculinempfindlichkeit der Rinder. – Zbl. Bakt. I. Abt. Orig., 1968, 206, 3. - P. 395-403.

205. Oudar J., Joubert L., Valette L. Repercussion de la thelite nodular mycobacterienne aur le depistage allergique de la tuberculose bovin. – Bull. Soc. Sci. Vet. Med. Comparae, 1968, 70, 1. - P.121-126.

206. Patnode R., Cummings M., Spendlove G. The adaptability of mice to the laboratory diagnosis of tuberculosis. – J. Lab. Clin. Med., 1949, 34. - P.1081-1095.

207. Pavlas M. Vyznam nekterych saprofutickuch mykobakterii pri paraalergickych reakciona savei tuberculin u skotu. – Vedercke, Prace vyzkumneho ustavu veterin Lekarstvi v. Brno, 1965, 4, P. 111-124.

208. Pavlas M. Diagnostice of mixed infections with Mycobacterium avian in cattle. – Asta Universitetis Agriculturae facultas Veterinaria, 1967, 36, 4. - P.549-557.

209. Pearson C., Corner L., Lepper A. Tuberculin sensivity of cattle inoculated with atypical mycobacteria isolated from cattle, fecal pigs and through water. – Austr. Vet. J., 1977, 53. - P.67-71.

210. Pelikan M., Mikova L., Kaustova J. Aerosol z uzitkove vody jako pravdepodobny factor prenosy pri infecti atypichymi mykobakteriemies. – Hygiena, 1973, 18, 6/7, P.316-323.

211. Penso G., Castelnuovo G., Geudiano A., Princivalle M., Vella L., Zampieri A. Studi e ricerche sui Micobacteri VIII Un nuovo bacillo tubercolare: II “ Micobacterium minetti” n. sp. Studio microbiologico e patogenetico R.C. – Ist. sup. Satin., 1952, 15. - P.491-496.

212. Repo U., Nieminen P. Tuberculous Pleurisy due to Mycobacterium fortuitum in a pacient with chronic granulocytic leukemia. – Scand. J. Resp. Dis., 1975, 56, 6. - P.329-336.

213. Pastana de Castro A., Campedelli Filno O., Weisbich E. Opportunist mycobacteria isolated from the mesenteric lymph nodes of apparently healthy pigs in san Paulo. – Brazil. – Pevista de Microbiologia. Brazil. 1978, 9, 2. - P.74-83.

214. Peterson K. Mycobacterium fortuitum as a cause of bovine mastitis: tuberculine sensitivity following experimental infection. – J. Am. Vet. med. Assoc., 1965, 147, 12. - P.1600-1607.

215. Popluhar L. K. diferencialnej diagnostike tuberkulozy u havadzicho dolyatka.-Veterenarativi. 1973, 23, P. 459-460.

216. Pritchard D., Stenford J., Raul R. A preliminary study of delayed hypersensitivity to Mycobacterium chelonei, Mycobacterium fortuitum, Mycobacterium gordonae in cattle from two areas in Uganda. – Brit. J. Exp. Pathol., 1974, 55, 4. - P.374-383.

217. Pust R., Onubogu H., Egornu L., Smithwick R. Pulmonary disease due to Mycobacterium fortuitum in a Nigerien. – Am. Rev. Resp. Dis., 1973, 108, 6. - P.1416-1420.

218. Reinhold L. Kolloqim: Die sog. “atypischer” Mykobakterien. – Beitr. Klin. Tuberk., 1962, 125, P.359-362.

219. Reus U., Vick K. Nachweis atypischer Mykobakterien in Heocaecallyphnoten klinisch gesunder Schachtkalber. – Berl. Munch. Tierarztl. Wschr., 1968, 81, 20, P. 400-404.

220. Richardson A. Bovine mastitis associated with Mycobacterium smegmatis and an untypable Mycobacterium. – Vet. Rec., 1970, 86. - P.497-498.

221. Rossi L. Allergy dynamics in cattle experimentally sensitized with some atypical mycobacteria. – Asta Vet., Brno, 1975, 44, 4. - P.377-384.

222. Runyon E. Anonymous mycobacteria in pulmonary disease. – Med. Clin. Amer., 1959, 43. - P. 273-290.

223. Runyon E. Differenciation des mycobacteries anonyms et des baccilles tuberculosis dees mamileres. – Bull. Union. Intern. Tuberc., 1959, 29, 1-2. - P.72-83.

224. Савов Н., Белчев Д. Проследоване на алергичнейс туберкулинави реакции при телята, експериментально заразени с различии видови микобактерии. – Изв. Центр. Вет. Ин-т заразени и паразитни болести. 1961. кн. I, 251.

225. Савов Н. Проучвания върху стилогията на туберкулиновите реакции при говадата. – 2-й Конгрес микробиол.ч.2. София, 1969, София, 1971.

226. Савов Н., Павлов Н. Изследования на крови, експериментально заразени с атипични микобактерии. – Вет. – мед. Науки, 1975, 12, P. 47-52.

227. Seelman M., Pakow H. Zur Allergie bei Infectionen mit verschiedenen Mykobakterien. – Mh. Tierheilk., Rindertuberk., 1955, 4, P. 153-171.

228. Schliesser Th. Ubeer der Vorkommen sog. “atypischer” Mykobacterien beim Rinde. Festsch. – Wien. tiererztl. Mschr., 1965, 52, 5, P. 555-564.

229. Schliesser Th. Atypicshe Mykobacterien bei Tieren. – Z. Tuberk., 1967, H., 127, P. 101-108.

230. Schliesser Th., Katikavidis A. Neuue Typendifferezierungen bei tuberculosen Schluchtrindern. – Arch. Lebensmittelhyg., 1969, 20, 5, P. 106-109.

231. Schmittdiel E., Reck G., Stritzinger H. Untersuchungen uber die Tuberkulinempfindlichtkeit von Rindern nach parenteraler Varareihung von Kompletten Freundschem Adjuwans. – Tierarztl. Umschau. 1970, 25, 9, P. 441-443.

232. Schuhwerk G. Unversuchenden uber die Tuberkulinenempfindlichkeit vor Kalbern nach Infektionen mit sog. “atypischen” Mykobakterien. Inang. – Diss. Nunchen, 1962.

233. Simon G. Seltene Mykobakterielle Erkrankungen bei Mensch und Tier Mykobakterien und Mykobakterielle Krankheiten. G. Messner., A.Schmiedel. teil VII. Gustav Picsher Verlag, Jena, 1970, P.306-322.

234. Sobiech T., Bochdalsk R., Nowaski J. Bonania nad swoistoscia odezynu tubeerkulinowego u bydla aztucznil zekazonego Mycobacterium phlei I Mycobacterium fortuitum. – Pol. Arch. Vet., 1970, 13, 4. – P. 243-257.

235. Sobiech T., Bochdalek R., Nowacki J. badonia nad swoistoscis odczynu tuberculinowego u bydla aztucznie zakazonego pratkanii niefotochromogenii iczybko rosnacymi. – Zesz. Probl. Postepow nauk roln., 1975, 164, P.169-171.

236. Stenford J., Beck A. Bacteriological and serological studies of fast growing mycobacteria identified as mycobacterium friedmannii. – J. Gen. Microbiol., 1969, 58. - P.99-106.

237. Stenberg H., Turunen A. Differenzierung aus Haustiere isolierten Mycobacterien. – Zbl. Vet. Med. Beiche B., 1968, 15, 4, P.494-503.

238. Stoll L. Die Anwendung von Sensitenen bei mycobacterielen infectionen des Mencshen und der Tiere. – Pneumologie (Berlin), 1972, 146, 4, P.269-274.

239. Stuart P., Harvey P. Bovine mastitis resembling tuberculosis caused by Mycobacteria lacticola and other rapidly growing acid-fast bacteria. – Vet. Rec., 1951, 63, 52. - P.881-885.

240. Szabo J., Vandra E. Classification des mycobacteries saprophytes. – Rev. immunol., 1961, 25, 5-6. - P.372-378.

241. Szabo J., Tuboly S., Szeky A. Swine lymphadenitis due to Mycobacterium avium and atypical Mycobacteria I. Pathological studies. – Asta Vet. Acad. Sei. Hung., 1975, 25, 1. - P.67-76.

242. Szabo J. Tubolu S., Szeky A., Kerekes J., Ubvardy N. Swine lymphadenitis due to Mycobacterium avium and atypical Mycobacterioa II studies on the role of literung in mycobacterial lymphadeitie incidence in large-scale pig units. – Asta Vet. Acad. Sei. Hung., 1975, 25 1. - P.77-83.

243. Szabo J. Pathogenese der atypischen Mykobacteriose bei Schweinen. – Mtsch. Veterinar-madizin., 1977, 32, 9, P.336-338.

244. Tarshis M., Prisk A. Chromogenious strains of acid-fast bacillus. – Am. Rev. Tuberc., 1952, 65, 3. - P.278-289.

245. Thiel W. Die Vervendbarkeit der Peldmans (Microtus awalis) zur Typendifferenzierung von Tuberkelbakterien. – Z. Hyg., 1957, 144, 3, P. 260-266.

246. Thoen C., Jaruagiu J., Richards W. Isolation and identification of Mycobacteria from porcine tissues: A threeyear summary. – Am.J. Vet. Res., 1975, 36, 9. – P. 1383-1386.

247. Thoen C., Himes E. Isolation of Mycobacterium chelonei from a granulomatouslesion in a pig. – J. of Clinical Microbiology, 1977, 6, 1. - P.81-83.

248. Thoen C. Mycobacteria isolated from exotie animals. – J. Am. Vet. Med. Assoc., 1977, 170, 9. - P.987-990.

249. Tlesja Yjell Y., Fodstad F., Ulvesaeter H. Tuberculose-ligneude foraudringer I lymfeknuter hos gris Forecomat, localisasjon, micobiologiske, epidemiologiske og patoznotosiske underskelsar. – Nord. Veterinar. Med., 1978, 30, 2, 2, P. 61-70.

250. Tuboly S., Szabo J. Zuchtung von Mycobacterium vaccae aus dem Rind. – Asta Vet. Hung., 1967, 17, 2, P.149-151.

251. Tuboly S. Szaravasmarhobol izolalt Micobacterium vaccae es bovistorz sek antigenszerkezetenek os szehasoulitaza. Adatok az un. Nem. Specificus tuberkulinreakciokhoz. – Magyar allatow. Japja, 1969, 24, 4, P. 198-199.

252. Tucker E. Infection of the bovina udder with Mycobacterium species. – The Cornel Veterinarian. 1953, 4, 43. - P. 576-599.

253. Tsukamura M., Toyama H., Mizuno S., Tsukamura S. Свойства и идентификация Mycobacterium phlei. – Мед. pеф. ж 1967. 9. 7:1291.

254. Viallier J. Проблема микобактериозов и атипичных микобактерий на XVI французком конгрессе по туберкулезу и легочным заболеваниям. Rev. Tuberc. Et Pneumolog., 1970, 34, 5. - P.619-633.

255. Weiszfeiler J., Vandra E. Die Biologie und variabilitat des Tubercelbakteriums und die atypischen Mycobacterien. – Akad. Kiado, Budapest, 1969.

256. Wells A., Aqius E., Stith N. Mycobacterium fortuitum. – Am. Rev. Tuberc., 1955, 72. - P.53-63.

257. Wolinsky E., Rynoarson T. Mycobacteria in soil and their relation to disease asotiated strains. – Am. Rev. Resp. Dis., 1968, 97. - P.1032-1034.

258. Jomamoto M. Современное состояние вопроса о легочных заболеваниях, вызываемых атипичными микобактериями в Японии, Тр. XXI Междунар. конф. по туберкулезу. М. 197. - C.147-148.

259. Zorawski C., Karpinski T., Skwarek P. Studies on the occurrence of avian an atypical mycobacteria in pigs. – Medycyna Weterinaryina. 1974, 30, 12. - P.711-714

Pages:     | 1 ||
Похожие работы:

«Правительство Российской Федерации Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего профессионального образования Национальный исследовательский университет Высшая школа экономики Факультет мировой экономики и мировой политики Кафе...»

«ЗАЯВЛЕНИЕ ЗА ВПИСВАНЕ НА ПРЕДПРИЯТИЕ ЗА ПЪРВИЧНО ПРОИЗВОДСТВО Можете да изпратите попълненото заявление на е-мейл адрес: HYPERLINK mailto:office@cosmocert.bgoffice@cosmocert.bg С настоящото заявявам желанието си за включване в системата за контрол и сертифициране на биологични продукт...»

«Федеральные нормы и правилав области промышленной безопасности Правила безопасности для объектов, использующих сжиженные углеводородные газы(утв. приказом Федеральной службы по экологическому, техноло...»

«Сборник трудов ХХІІІ международной научно-практической конференции "Инновационные пути решения актуальных проблем базовых отраслей, экологии, энергои ресурсосбережения" 1-5 июня 2015...»

«ПРОЕКТПОРЯДОК И СРОКИ представления, рассмотрения и оценки предложений заинтересованных лиц о включении дворовой территории в муниципальную программу"Обеспечение доступным и комфортным жильем и коммунальными услугами жителей Белгородского районана 2015 – 2020 год...»

«Введение в феномен посттравматического роста (ПТР) Все мы знаем высказывание, сделанное Ницше 1888 году: Всё в жизни, что меня не убивает, делает меня сильнее. Это выражение заключает в себе суть феномена посттравматиче...»

«САБА ЖОСПАРЫ Пн аза дебиеті Малім Трали Трсынгл Мектеп, сынып Атырау облысы, ызылоа ауданы, Миялы ауылы, Х. Досмхамедлы орта мектебі, 8-сынып Саба таырыбы М. Маатаев “Аулар йытаанда” поэмасын талдау (2-сааты) Сабаты масаты1.Білі...»

«МБОУ "Краснощёковская СОШ № 1" Алтайского края Исследовательская работа по теме: Правильная осанка – залог здоровья. Выполнила: Измайлова Анастасия, ученица 9 "Б" класса Руководитель: Гревцова Валентина Александровна, учитель химии и биологии 2012 г. Введение Приятно смотреть на с...»

«ОБЗОР СУДЕБНОЙ ПРАКТИКИ ПО НАЛОГОВЫМ СПОРАМ Ежемесячный выпуск 3/2016 Ключевые судебные решения Суд вправе снижать размер судебных издержек до разумных пределов (Определение КС РФ от 29.03.2...»

«Положение городского электрического транспорта в России С.С. Закиров, и.о. исполнительного директора МАП ГЭТ В.А. Матросов, генеральный директор ОАО "Рыбинскэлектротранс" Е.В. Матвеева, исполнительный редактор журнала "Техника железных дорог" На протяжении ряда...»

«КАЗАХСКИЙ НАЦИОНАЛЬНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ им. АЛЬ-ФАРАБИ Утверждено на заседании научнометодического совета КазНУ им. аль-Фараби Протокол №6 от "07" июля 2017 г. Проректор по учебной ра...»

«Колотикова Анна Михайловна Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова Факультет иностранных языков и регионоведения e-mail: alucardy@list.ru Anna M. Kolotikova, Lomonosov Moscow State University Faculty of Fore...»

«БИОТЕРРОРИЗМ: ФАКТЫ И КОМЕНТАРИИ О.М. Карабан, А.М.Дащук* В.П.Корж Харьковская академия последипломного образования Харьковский государственный медицинский университет * Ключевые слова: биопатогены, искусственное распространение, прогнозировани...»

«Недельный план работы МУ "Оргцентр" с 15 по 19 февраля 2016 года № п/п Содержание работы Дата проведения Место и время проведения Ответственные Участие учителя химии, биологии МОУ "Лицей" Щипановой С.И. в курсах по теме "Подготовка...»

«Приложение 2 к приказу Министра образования и науки Республики Казахстан от 9 декабря 2008 г. № 640   Список стипендиатов государственных научных стипендийдля талантливых молодых ученых   № п/п Ф.И.О. Место работы                    Биологические и медицинские науки 1 Алтыб...»

«ФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА ПО ЭКОЛОГИЧЕСКОМУ, ТЕХНОЛОГИЧЕСКОМУИ АТОМНОМУ НАДЗОРУПРИКАЗ от 19 августа 2015 г. № 328ОБ УТВЕРЖДЕНИИ ТРЕБОВАНИЙК ПРОВЕДЕНИЮ КВАЛИФИКАЦИОННОГО ЭКЗАМЕНА ПО АТТЕСТАЦИИЭКСПЕРТОВ В ОБЛАСТИ ПРОМЫШЛЕННОЙ БЕЗОПАСНОСТИ Список изменяющих документов (в ред. Приказа Ростехнадзора от 12.05.2016...»

«Личная безопасность и свобода в техногенной системе (Personal security and freedom in technogenic system) Экология духа Уважаемые дамы и господа! Я хотел бы поговорить о тенденциях в развитии нашей цивилизации, которые лежат на поверхности, но в то же время остаются незамече...»

«Информация об объектах государственной экологической экспертизы федерального уровня (по состоянию на 03.05.2017) № п/п Наименование объекта ГЭЭ Заказчик Номер приказа об организации ГЭЭ (с указанием срока работы комиссии) Планируемая...»

«ПРОЕКТ Российская Федерация Калининградская областьОКРУЖНОЙ СОВЕТ ДЕПУТАТОВМУНИЦИПАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ "СВЕТЛОВСКИЙ ГОРОДСКОЙ ОКРУГ"-100965121920РЕШЕНИЕ № _ _._.2016 г. Светлый Об утверждении Положения "О порядке установки мемориальных досок на фасадах зданий, сооружений МО...»

«МИНИСТЕРСТВО ПРИРОДНЫХ РЕСУРСОВ И ЭКОЛОГИИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА ПО ГИДРОМЕТЕОРОЛОГИИ И МОНИТОРИНГУ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ Федеральное государственное бюджетное учреждение "Всеросси...»

«Карагяур Максим НиколаевичВЛИЯНИЕ МЕЗЕНХИМАЛЬНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК НА ВОССТАНОВЛЕНИЕ ПЕРИФЕРИЧЕСКОГО НЕРВА ПОСЛЕ ТРАВМЫ 03.01.04 – Биохимия 03.03.04 – Клеточная биология, цитология, гистология Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук Москва – 20...»

«Методические рекомендации к практическим занятиям по биологии Лабораторная работа №1 Наблюдение клеток растений и животных под микроскопом на готовых микропрепаратах, их описание.Цель: рассмотреть клетки различных организмов и их тканей под микро...»

«РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯПРАВИТЕЛЬСТВО КАЛИНИНГРАДСКОЙ ОБЛАСТИПОСТАНОВЛЕНИЕ от 19 января 2012 г. № 9 Об организации природного парка ВиштынецкийВ соответствии с Федеральным законом от 14 марта 1995 года № 33-ФЗ Об особо охраняемых природных территориях, Законом Калининградской области Об особо охраняемых природных...»

«МБОУ Малозиновьевская основная общеобразовательная школа Урожайность разных сортов картофеля, выращенных на пришкольном участке Исследовательская работа по биологии Выполнили: ученицы 8 класса Шоронова Анна Кузьмичева Надежда Руководитель: Акишенкова З. М. Д.Малое Зиновьево2012г. Содержание Введение..3стр. Пра...»

«ТИПТІК ОУ БАЄДАРЛАМАСЫБАКАЛАВРИАТ БЕКІТЕМІН Р ДСМ Єылым жјне адами ресурстарды дамыту департаментініѕ директоры _ Н.Хамзина "_" 2009ж.БИОЛОГИЯЛЫ СТАТИСТИКА Мамандыєы: 051102 "оєамды денсаулы сатау" Саєат кґлемі – 1 кредит (45 саєат) азастан Республикасы Денсаулы сатау министрлігі Астана-2009 АЛЄЫ СҐЗ...»

«Федеральное государственное автономное образовательное учреждениевысшего профессионального образования"СИБИРСКИЙ ФЕДЕРАЛЬНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ" Институт фундаментальной биологии и биотехнологии Кафедра биофизикиРЕФЕРАТ по Информационно-коммуникационным технологиям в естественнонауч...»

«Государственное управление на основе открытых данных: перспективы развития Е.М. СтыринАннотация В работе рассматриваются перспективы использования открытых данных для стимулирования вовлеченности гражда...»

«МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИОБЩАЯ ФАРМАКОПЕЙНАЯ СТАТЬЯ Потеря в массеОФС при высушиванииВзамен ст. ГФ XI Настоящая общая фармакопейная статья предназначена для определения потери в массе при высушивании в лекарственных средствах и в иммунобиологических л...»









 
2018 www.el.z-pdf.ru - «Библиотека бесплатных материалов - онлайн документы»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 2-3 рабочих дней удалим его.